你们要的高效转导的『内皮细胞特异性AAV』来了!

2021-02-22 11:26:57, 搬砖小陈 上海吉凯基因医学科技股份有限公司


脉管系统中的血管内皮细胞(Vascular Endothelial Cells)参与许多生理过程如血管通透性、血管生成、炎症,以及病理相关如动脉粥样硬化、高血压、缺血性心脏病、糖尿病性微血管病、血管炎、血栓栓塞性疾病和癌症。因此,基于EC的基因治疗前景广阔。


然而,转胞吞作用、EC的定期更换和丰富的细胞外基质限制了EC转导效率,有效的基因递送手段对于EC研究显得十分重要。重组腺相关病毒(rAAV)是目前基因治疗最有吸引力的工具,它能够转导分裂和非分裂细胞,引发有限的免疫应答,以及赋予转基因长期表达的能力。 


先前的研究主要利用rAAV血清型2。如Chang1在后肢缺血的大鼠模型中,运用rAAV2在动脉内递送血管内皮生长因子(VEGF),并且报道了新的侧支血管的显著增加及肌肉氧张力改善。但问题是血管细胞的转导效率相对较低,因此本文从rAAV技术出发,基于血清型及启动子两个角度改善对EC细胞的基因递送。


血清型篇

1.常规血清型

Birmingham2构建报告系统验证AAV1-5常规血清型对EC细胞在in vivo和 in vitro的感染情况,结果显示:AAV1和AAV5对EC感染能力较强,AAV5最优,但存在表达延迟现象:


ELISA测定不同血清型AAV转导大鼠主动脉内皮细胞(RAEC)基因表达水平


用AAV1,2,5血清型载体转导大鼠主动脉区段并以荧光素酶进行检测。rAAV1( B ),rAAV2( C )和rAAV5( D ),箭头表示EC的阳性染色


以上结果表明:使用rAAV血清型1和5用于血管靶向的基因递送有显著优势,但上述血清型还会对平滑肌及其他脏器有着较强的感染效率,限制了其在基因治疗上面的进一步应用。


2.特异性血清型

在体动脉内递送rAAV脱靶的组织主要为:血管介质中的平滑肌细胞、肝脏等器官(AAV天然靶向且血液流向集中);Nicklin3通过噬菌体展示分离技术,在2型AAV上插入了EC靶向肽SIGYPLP,命名为AAVsig,与传统2型相比,AAVsig对脐静脉内皮表达增加约5.9倍,对隐静脉内皮细胞增加约28.2倍。


AAVsig介导增强的EC基因转移。用增加剂量的AAVwt或AAVsig感染EC并分析β-半乳糖苷酶表达。(A)人脐静脉内皮细胞HUVEC。(B)人隐静脉内皮细胞HSVEC


除了对所需细胞类型的增强趋向性之外,Nicklin还验证了AAVsig对平滑肌及肝细胞的表达情况,结果显示,AAVsig比野生型具有对EC细胞更强的靶向性(bafilomycin A2试剂能额外增强AAVsig对EC细胞的感染)。


低、高剂量的AAVwt或AAVsig感染人原代血管平滑肌细胞(A)或HepG2肝细胞(B)于72小时表达情况


3.高转导血清型

发表于Nature的另一篇文章采取相同的策略,在rAAV9衣壳A589位点插入两种七肽RGDLRVS和SLRSPPS,以流式筛选荧光确认感染效率,并论证两者对EC感染情况:


冠状动脉内皮细胞(HCAECs);人冠状动脉平滑肌细胞(HCASMC);肝肾等来源的永生化细胞(HEK293T,HeLa,911,HepG2)


数据显示,rAAV9插入肽有效地提升了对EC细胞的感染效率,但不具有EC靶向性,作者的出发点是:AAV9比AAV2在人体含有更低的免疫原性,可以逃避中和抗体,增加临床应用可行性(文章最后选定SLRSPPS,具体数据本文未显示)。


病毒、免疫球蛋白(IVIG)或ADK9(衣壳结合AAV9抗体)、293细胞共孵育,以流式筛选EGFP阳性细胞,突变体SLRSPPS和RGDLRVS分别显示出比wtAAV9,wtAAV2或AAV2-NDVRAVS 更好的体外抗体逃逸约4倍和8倍:


横坐标表示稀释倍数,纵坐标表示被中和的百分比


4.中枢神经系统靶向型BR1

对于脑部及脊髓中枢神经系统(CNS)的EC递送更加有挑战性。新型的AAV-BR1血清型同样基于外壳改造,获得了脑部内皮靶向的专一性,而且还具有尾静脉注射的便利性。作者依靠BR1血清型在尿失禁性黄疸(IP)小鼠模型上减弱了该CNS遗传性疾病,并展望了用于治疗其他的神经系统疾病5

不同AAV尾静脉注射荧光成像图

启动子篇

1.ICAM-2启动子

人细胞间粘附分子2(ICAM-2)表达局限于血管内皮细胞和巨核细胞,Cowan6鉴定了该基因0.3k的启动子,并验证了其EC特异性(展示部分数据):


荧光素酶报告验证的ICAM-2表达活性

BAEC牛主动脉内皮细胞,COS猿猴肾成纤维细胞系


2.TIE启动子

另外一种内皮特异性启动子来源于酪氨酸激酶受体TIE1/2基因,与ICAM-2调控原理类似,三种启动子在内皮的特异性主要由PEA3基序决定:


TIE启动子内部的PEA3基序


Korhonen4使用TIE启动子构建β-半乳糖苷酶系统(染色验证)转基因小鼠,并验证了启动子表达分布(展示部分数据):


B:表达限定于大血管的EC,心内膜(箭头)只有弱阳性

D:肝脏中只有少数小动脉表达(箭头)

EC的动物注射

除BR1静脉注射,常规病毒多以区段动脉注射为主(为的是隔离脏器),内皮细胞的在体AAV注射主要步骤为:


以下截取文章部分注射流程(更多详情见文章):


1.腹动脉注射

腹主动脉的肾下段在麻醉下(2.5%异氟烷)通过中线切口暴露,夹在肾动脉正下方,血管插管引入分离的血管段,主动脉用生理盐水冲洗。 用rAAV1,rAAV2或rAAV5-Luc-EYFP(20μl,1×1013病毒颗粒/毫升)或等体积的盐水(每组n = 3)在腔内转导该区段。 使病毒在主动脉中停留30分钟,然后取出插管并缝合切口。 转导后3周处死大鼠,并通过免疫组织化学分析转基因表达2


2.颈动脉注射

左颈动脉通过中线颈部切口暴露; 用局部利多卡因1%(Lidocain; Orion)避免血管痉挛,无创伤血管夹之间分离1.5至2.5厘米的颈动脉段,并通过近端和远端动脉切开术将两个24号Neoflon套管引入管腔。通过用0.9%盐水温和冲洗使血管腔清除血液,并将约100μl含有或不含有40μMMG-132或相同体积的0.9%盐水的AAV2-CMV-EGFP-WPRE病毒滴入容器腔并原位停留20分钟。 在孵育期后,用0.9%盐水冲洗血管腔,使用缝合线修复,并通过移除夹子恢复血流7。 


综上所述,结合改造血清型+特异性启动子是最优AAV感染EC的方式,吉凯基因为EC研究者倾情奉上所述AAV试用装,期待您的参与!!!


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【参考文献】

1.Efficient transduction of vascular endothelial cells with recombinant adeno-associated virus serotype 1 and 5 vectors;

2.Adeno-associated viral vector-mediated gene transfer of VEGF normalizes skeletal muscle oxygen tension and induces arteriogenesis in ischemic rat hindlimb;

3.Efficient and Selective AAV2-Mediated Gene Transfer Directed to Human Vascular Endothelial Cells;

4. Endothelial-Specific Gene Expression Directed by the tie Gene Promoter In Vivo;

5.A brain microvasculature endothelial cell‐specific viral vector with the potential to treat neurovascular and neurological diseases;

6.The Human ICAM-2 Promoter is Endothelial Cell-specific in Vitro and in Vivo and Contains Critical Sp1 and GATA Binding Sites;

7.Cell-type-specific characteristics modulate the transduction efficiency of adeno-associated virus type 2 and restrain infection of endothelial cells;

封面图片@Chris Phillips

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