2023-01-28 12:18:45, 赛默飞生命科学 赛默飞世尔科技生命科学产品

上篇我们对经典分子克隆技术和无缝组装克隆技术进行了比较,经典分子克隆兜兜转转、如琢如磨,而无缝组装克隆技术却能做到操作简单和方便快捷。那它究竟是如何实现的呢?本期我们就来具体聊聊无缝克隆的四步致胜奇招。
基于同源序列的无缝组装克隆技术,关键是利用PCR引物,在目标片段两端引入与线性化载体两端同源的一段序列。基本策略是:
选定插入外源片段的位置,以此线性化载体
设计包含线性化载体两端序列和目标片段两端序列的引物,扩增目标片段
扩增片段与线性化载体、组装预混酶混合反应
转化感受态细胞
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Step 1
如果载体上正好有合适插入目标片段的酶切位点,酶切载体使之线性化。为了降低单酶切载体不完全的几率,减少载体自连和提高筛选成功率,强烈建议双酶切——后面一个切点只要距离第一个切点5个碱基以上就行(主要是给两个酶留出结合空间)。如果没有合适的酶切位点,根据选定插入位点设计引物,用反向PCR来获得线性化载体。在多片段组装克隆的世界里,凡是酶切搞不定的,统统PCR引物设计搞定。简单粗暴有效。
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Step 2
根据线性化载体两端的序列,设计目标片段的引物——划重点!这对引物外侧要有15-40碱基与载体两端分别同源,内侧要有15-20个碱基与目标片段同源。如果想要设计启动子SD序列跟ATG的距离,这就是好机会。合成引物不要超过65个碱基为好。
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Step 3
以这对引物PCR目标基因,就能得到两端与载体同源的目标片段。按比例混合片段和线性化载体,加入关键试剂——预混酶并在50度保温15-60分钟(因插入片段数量而略有不同,以操作手册为准)——以赛默飞的GeneArt™ Gibson Assembly® 克隆试剂盒系列为例,Gibson Assembly实际上是生命科学狂人文特尔(就是那个敢单挑6国合力的国际人类基因组计划还占尽上风,逼得当时美国总统出面协调让双方合作并同时发表结果的)东山再起后成立的Venter研究所旗下Gibson博士开发的,里面包含了精心优化搭配的三种酶活性:外切酶会外切双链末端而产生单链3’突出端,使得外源片段和线性化载体的互补末端能够退火,聚合酶活性会填补退火片段产生的缺口,连接酶活性能够在重组后进行连接。得到的产物是闭合载体,可以直接进入Step4了。
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Step 4
转化感受态细胞或者RCA了。还有的产品甚至连后面的聚合酶和连接酶都不需要,克隆效率一样高还能避免填补缺口时的意外错配,强的。
因为整个过程不会引入额外的碱基,可在预定位置精准插入外源片段,因此亦有无缝克隆,无痕克隆的美誉。这个方法还可以实现一步完成多个片段连续组装,只要设计PCR引物让相邻片段之间具有15-30个碱基的同源序列重叠,就可以实现单管一步反应,完成组装,而且还成功率高,保真度高,能大大减少重复筛选验证的工作量。
多片段连续组装如此简单易行,有越来越多应用之处——不单用于一般的多亚基/多调控元件/多蛋白表达载体构建、或者融合基因,还可以用于合成超大片段基因且成本低廉;甚至基因的多位点定点突变甚至改造DNA也能大显身手——只要在目标基因内分区并在设计PCR引物时引入突变位点或者改造序列就可以实现。
当然,不同的需求和应用:2-3个片段组装和15个片段组装、1-2kb和100kb片段组装,实际操作起来优化条件肯定不完全一样,甚至超长片段适用的转化菌株也跟普通菌株不一样(比如GeneArt EX超长版就建议用DH10B电转感受态细胞)。市面上有多种为满足不同需求而优化条件的商品化组装克隆试剂盒,可以根据自己的需求选出最合适自己需要的——选对合适的Kit,每天都是好心情,实验高歌猛进充满成就感;选不合适就只能天天re-search了——反反复复来来回回(re-)地摸索(search)尝试,挺折磨的。选择kit时一般留意几个参数:插入片段长度,单次反应可插入片段数量,同源序列长度——即合成引物时要求添加的载体同源序列长度,反应时间,当然还有克隆效率(几个领先品牌的产品说明都显示单片段插克隆效率>95%——片段越多效率会下降的)……市售产品中,是否包含感受态细胞,是否包含质粒纯化试剂或者PCR纯化试剂,都会影响产品单价。
后继的筛选验证工作同经典方法一样——抗性筛选,挑克隆扩增纯化,电泳+酶切或者PCR验证,最后挑几个最有可能的克隆去测序验证。如今分子克隆中的PCR一般都会选择高保真酶——出错率比Taq低得多、扩增长片段效果更好,要是几十kb还得是EX加长版高保真酶——相比后继测序验证的费用,这钱万万省不得的。

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