2026-07-27 11:31:28, ZHX Cytiva(思拓凡)
如果深层过滤器只被看作“能过滤多少L/m²”的耗材,我们就低估了它在下游工艺中的真实价值。
在大多数深层过滤器选型中,载量往往是第一个被讨论的指标。不同滤器组合载量能达到多少 L/m²?压差上升是否可控?滤后浊度能否达到工艺要求?这些问题当然重要。尤其在CHO细胞培养液澄清场景中,载量直接关系到滤器面积、耗材成本、系统占地和批次运行稳定性。
载量仍然是深层过滤器的基础指标。一个合格的深层过滤方案,首先必须在目标通量下维持可接受的压差增长,并在合理面积内完成批次处理。但如果一个深层过滤器的评估只停留在载量,结论往往是不完整的。载量只能回答“能处理多少物料”,不能回答“处理后的物料是否更适合下游工艺开发”。
随着抗体工艺向高细胞密度、高表达量和高浓度制剂发展,下游真正面临的挑战已经从“能不能过滤”逐渐转向“过滤后物料质量是否更好、后续负荷是否更低、小试结论能否可靠放大”。如果某个滤器组合载量略高,但HCP、DNA、颗粒等控制较弱,后续AEX、CEX、除病毒过滤的负担可能反而增加。相反,一个在杂质去除和放大一致性上表现更好的滤器,可能在整个工艺中带来更高的总体价值。
因此,深层过滤器的评价维度也需要从单一载量,扩展到杂质去除、产品回收、放大一致性等问题。
传统意义上,深层过滤主要被用来去除细胞、细胞碎片和可见颗粒。但在抗体工艺中,深层滤材还可能通过电荷、疏水作用和多孔结构吸附部分可溶性杂质,尤其是HCP。
对于某些Protein A后或病毒灭活后物料,pH调节过程中会形成沉淀,同时HCP仍处于较高水平。如果在这一节点选择合适的带电深层过滤器,就可以把“澄清步骤”进一步升级为“杂质负荷降低步骤”。
Cytiva PDC3深层过滤器的病毒灭活后澄清研究很好地说明了这一点1。该研究使用由两层带正电EK1P滤材构成的PDC3深层过滤器处理pH调节后的VI后mAb物料。
在测试中,进料HCP为3551 ppm,PDC3在140 L/m²通量下达到98% HCP去除,在200 L/m²通量下仍实现94% HCP降低,并保持92.1% mAb回收率。研究结论指出,PDC3每平方米滤膜可能去除约9 g HCP,从而有效降低后续精制层析负荷。
图1:PDC3用于病毒灭活后mAb物料澄清的HCP去除结果
这个案例把深层过滤器从“颗粒去除耗材”变为“下游杂质控制工具”。对于HCP负荷偏高、VI后pH调节有沉淀、或后续精制步骤压力较大的项目,PDC3这类带正电深层滤器可以作为降低HCP负荷的可靠方法。
相比其他深层滤器,PDC3由两层滤板组成,并且填充了特殊正电荷修饰的树脂,使其在HCP去除上有较好效果。
除HCP外,深层滤器中的金属离子残留也值得关注。Fe、Cu等金属离子可能促进氧化反应;Zn、Ca等金属离子则可能与某些金属依赖性蛋白酶或蛋白结构稳定性相关。在抗体工艺中,金属离子并不一定单独构成风险,但当金属离子、残留蛋白酶和应力条件共同存在时,可能放大抗体片段化或稳定性风险。
因此,深层过滤器如果能够在澄清阶段同时降低部分金属离子,将有助于从源头降低后续质量风险。
Cytiva深层滤器经过使用前的水冲洗后,金属离子降到足够低的水平,有助于避免残留金属离子造成的抗体质量风险2。
In WFI | |
Aluminum(AI) | < 0.05 ppm |
Calcium(Ca) | < 0.5 ppm |
Magnesium(Mg) | < 0.1 ppm |
Iron(Fe) | < 0.1 ppm |
Nickel(Ni) | < 0.01 ppm |
Copper(Cu) | < 0.1 ppm |
Chromium(Cr) | < 0.01 ppm |
Arsenic(As) | < 0.01 ppm |
Lead(Pb) | < 0.01 ppm |
表1:Cytiva深层滤器经50 L/m2 WFI冲洗后金属离子水平
(更多数据请联系Cytiva相关技术人员获取)
深层过滤器选型另一个经常被低估的维度,是放大一致性。小试筛选通常依赖小面积囊氏滤器完成,指导生产规模使用更大面积滤器。一旦不同规格之间深层滤器存在明显载量偏移,浊度、收率等差异,小试数据就很难可靠指导放大。
如果缺少足够的放大一致性保证,放大选型过程中,为了确保放大工艺的稳定安全运行,难免要提高安全余量,选择更大的膜面积。更大的膜面积,带来的不仅仅是滤器成本的增加,同时也会造成更多的顶洗体积,产品收率和下游纯化的工艺时间都会造成不同程度的影响。
良好的放大一致性可有效减少这类问题的发生,让小试实验真正指导生产选型。
以下案例研究了Cytiva深层滤器放大一致性的问题3,4。
CHO细胞在500 L反应器中培养,并以平行方式、重复方式验证小试,中试,放大滤器(表2)。一级过滤使用PDP8滤材。一级试验得到的滤液混合后,对二级PDE2滤材进行可放大性评估。
一级滤器 | 浊穿前浊度 | 滤后平均浊度 |
PDP8 | 118±17% | 329±16% |
二级滤器 | 压力终点压差 | 滤后平均浊度 |
PDE2 | 11.0±15% | 1.9±23% |
表2 :一,二级滤器不同规模过滤后性能表现差异
图2:PDP8深层过滤器在不同规模下的可放大性数据
图3:PDE2深层过滤器在不同规模下的可放大性数据
放大案例研究显示,在深层过滤的重复样和不同规模之间,容量变异约为±15%至17%,且没有发现不同规模之间存在明显载量偏移的证据。这组数据说明小面积格式并不只是“缩小模型筛选工具”,而是可以用于预测更大规格滤器表现的开发平台。
因此,今天再讨论深层过滤器,问题不应该只是“载量多少”,更完整的问题应该是:
在合适载量下,压差是否可控?
滤后浊度是否稳定?
HCP、DNA、颗粒等关键杂质是否降低?
后续下游工艺中这些杂质是否可以满足工艺需求?
小试试验能否预测生产规模?
产品回收率是否可接受?
这些问题共同决定深层过滤器在整个下游工艺链中的价值。
从Cytiva产品组合来看,PDP8/PDE2代表了面向CHO收获液澄清的平台思路,强调在不同规模上的一致性和可放大性;PDC3则展示了带正电深层滤器在降低HCP的潜力;不同规格则为从小试筛选到生产放大提供了连续的规格选择。
深层过滤器当然要看载量,但不能只看载量。真正有价值的深层过滤方案,应当同时帮助工艺开发者降低杂质负荷、控制质量风险、提高放大确定性,并为后续工艺创造更稳定的条件。
下一次评估深层过滤器时,不妨把问题从“这块滤器能过滤多少料液?”升级为:“这块滤器能为整个工艺减少多少不确定性?”
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参考文献:
1.Host cell protein removal by Seitz™ PDC3 depth filter after virus inactivation in mAb processing,Cytiva
2.USTR2366c Validation Guide Seitz® P-series Depth Filter Media, Cytiva
3.Demonstrating the scalability of Cytiva P-grade depth filters for CHO cell culture clarification, Cytiva
4.Flow distribution and scalability of depth filter capsules,Cytiva
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