2026-06-11 18:07:45 苏州海狸生物医学工程有限公司
小鼠 CD4+CD25+ 调节性T细胞(Treg)分选试剂盒专门用于从小鼠脾脏单细胞悬液中高效分选 CD4+CD25+ Treg 细胞。
本试剂盒采用两步分选策略:第一步(富集):通过免疫磁珠去除非目标细胞,实现 CD4+ T细胞的预富集;第二步(阳性选择):利用CD25抗体特异性标记目标细胞,并由可解离磁珠(BeaverBeads®)进行捕获,随后通过 Release Buffer将磁珠从细胞表面温和解离。最终获得无磁珠标记的小鼠CD4+CD25+ Treg细胞,可直接应用于下游的分子生物学与细胞生物学实验。
产品特点
高纯度:分选获得的Treg细胞纯度可达 90%;
高活率:分选过程温和,获得的细胞活率大于95%;
无柱分选:无需分离柱,仅使用磁力架即可完成目的细胞分离;
多细胞群体获取:通过初步富集可获得CD4+ T细胞;进一步分选后,不仅可获得CD4+CD25+ Treg细胞,还可同时收集 CD4+CD25- T细胞,便于开展后续对照实验或功能研究。
使用BeaverBeads®小鼠Treg细胞分选试剂盒中CD4 Enrichment Beads组分对小鼠脾脏CD4+ T细胞先进行富集。富集前后的细胞用FITC标记的anti-mouse CD4 抗体(克隆号 GK1.5)染色后进行流式细胞分析。结果显示,CD4+ T细胞脾脏初始占比为15.87%,富集后CD4+ T细胞纯度可达90.20%(90.58±1.89%)(图1)。
图1. 流式检测富集前后CD4+ T细胞纯度
使用BeaverBeads®小鼠Treg 细胞分选试剂盒从富集后的CD4+ T细胞分选Treg细胞。分选前后的细胞用FITC标记的anti-mouse CD4 抗体(克隆号 GK1.5)和PE标记的anti-mouse CD25抗体(克隆号3C7)进行染色。结果显示,脾细胞中CD4+CD25+ Treg细胞占比为1.73%(图2左),分选后Treg细胞纯度达93.04%(图2中);同时可获得CD4+CD25- T细胞,其纯度为90.08%(图2右)。
图2. 流式检测分选前后CD4+CD25+ Treg细胞纯度
为进一步验证分选细胞的Treg特性,采用固定/破膜后进行胞内染色,检测关键转录因子FOXP3 的表达。分选前后的细胞用FITC标记的anti-mouse CD4 抗体(克隆号 GK1.5)、 PE 标记的anti-mouse CD25抗体(克隆号 3C7)和Alexa Fluor647标记的anti-mouse Foxp3(克隆号 150D)染色。流式结果显示,分选后CD4+细胞占比95.24%,其中CD25+ FOXP3+双阳性细胞占CD4+细胞的86.12%, 证明本试剂盒可获得具有典型Treg表型(CD4+ CD25+ Foxp3+ )的目标细胞(图3)。
图3. 分选前后CD4+CD25+Foxp3+ Treg细胞流式染色分析
用BeaverBeads®小鼠Treg细胞分选试剂盒从脾脏分选目的细胞,分选前后细胞经 7-AAD 染色后,使用流式细胞仪检测细胞活率。分选前活细胞比例为95.90%,分选后CD4+CD25+ Tre细胞的活细胞比例为96.49%,CD4+CD25- T细胞的活细胞比例为96.85%,均保持高活率(图4)。
图4. 流式检测分选前后细胞活率
为评估分选所得Treg细胞的生物学功能,将分选获得的CD4+CD25+ Treg细胞与CD4+CD25- T细胞进行共培养,检测其对效应T细胞增殖的抑制能力。将CD4+CD25-细胞进行CFSE染色后,使用小鼠CD3/CD28激活磁珠进行刺激,培养3天。72 h后通过流式细胞术检测发现,77.55%的细胞发生增殖。而在加入CD4+CD25+ Treg细胞(1:2)共培养条件下,增殖比例明显下降至49.55%(图5)。结果表明,本试剂盒分选获得的Treg细胞具有免疫抑制功能,可有效抑制效应T细胞增殖。
图5. 分选后Treg细胞抑制功能检测
产品信息
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海狸成立于2011年,位于苏州工业园区,是国内最早从事纳米磁性材料技术研发及产业化的企业之一。企业相继入选国家级高新技术企业、苏州工业园区科技领军(纳米专项)苏州市“姑苏人才计划”和江苏省“双创计划”。
十多年专注磁珠技术开发及产业化,向市场提供了200余项磁珠类产品。应用方向涉及到分子诊断、免疫诊断、食品药品安全检测、环境检测、动物疫病检测、免疫细胞治疗、生物制药和生物科研等领域。
海狸公司已申请专利60余项;SCI科技论文引用2000余篇;主导发布国际标准1项,参与起草国内标准3项;拥有ISO9001和ISO13485国际质量管理体系认证;取得I类医疗器械产品备案及生产备案近20项并具有II类医疗器械经营资质。
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