Agrifood | 科研干货:秀丽隐杆线虫抗肥胖实验全流程标准化指南(可直接复现)

2026-05-26 09:38:59 Know it All光谱数据库


全球肥胖已成为重大公共卫生难题,多酚、萜类、多糖等食品生物活性物质,是预防与干预肥胖的重要方向。而秀丽隐杆线虫凭借培养简单、生命周期短、身体透明、脂质代谢通路与哺乳动物高度保守等优势,成为食品活性物抗肥胖筛选与机制研究的理想模式生物。

目前该领域缺乏统一实验标准,方案差异导致结果难以重复、跨研究无法对比。 2026年1月,AgriFood 期刊发表权威指南Guidelines for the Anti-Obesity Assays of Food Bioactives in Caenorhabditis elegans,系统规范秀丽隐杆线虫培养→肥胖模型构建→脂质定量→生理表型→基因机制全环节操作,填补该领域实验标准化空白,为功能性食品抗肥胖研究提供可重复方案。

一、秀丽隐杆线虫基础培养体系(标准配方)


1. 基础培养

• NGM 培养基:12g 琼脂 + 1.8g NaCl+1.5g 蛋白胨 / 600mL,121℃灭菌 30min,冷却至65后依次添加 1 M MgSO₄、1 M CaCl₂各600 μL,5 g/L 胆固醇溶液,磷酸钾缓冲液 15 mL等。

• E.coli OP50培养:LB 培养基(10 g 胰蛋白胨 + 5 g 酵母粉 + 10 g NaCl,1 L 超纯水)37℃、220r/min 摇床培养 12 h,添加30g/L 链霉素。


2. 线虫同步化(关键步骤)

• 裂解液(现配现用):5 M NaOH : 5% NaClO = 1:2(体积比)

  • 操作流程:
  • M9 缓冲液清洗产卵 2–3 天的成虫
  • 加入裂解液反应约 2 min
  • 6000 rpm 离心 1.5 min,弃上清
  • M9 缓冲液反复清洗 2–3 次
  • 获得同步虫卵,M9 中孵育 18–24 h 得到同期 L1 幼虫
  • 孵育18–24 h后接种。

二、 肥胖模型建立(标准诱导方案)


1. 核心方法:营养过载诱导肥胖模型

• 诱导剂:1mM 葡萄糖(NGM 冷却至 60℃加入)或0.02mM 棕榈酸添加至 NGM(配培养基时直接加入,一同灭菌)。

图1 秀丽隐杆线虫抗肥胖模型的建立

• 处理流程:同步 L1 幼虫在普通 NGM 上培养至L4 期;L4 期幼虫转入含诱导剂的NGM平板,20℃培养16 h后收获Day1成虫。


    2. 活性物质干预方式

    食品生物活性成分同步加入诱导培养基,全程处理

    三、 脂质积累定量检测(三大权威检测方法)

    检测方法
    核心操作
    定量指标
    关键参数
    油红 O 染色(最常用,可视化强)
    甲醛固定→反复冻融→脱水→染色→复水
    红色阳性面积占比
    37℃、220rpm 染色4h;统计≥30 条线虫
    DHS‑3::GFP荧光成像(特异性更高)
    荧光品系培养→ levamisole 麻醉
    绿色荧光面积占比
    100× 镜检;统计≥30 条线虫
    TLC 甘油三酯测定(生化金标准)
    氯仿:丙酮(1:1)提脂→层析→显色
    TAG 质量 / 总蛋白质量
    展开剂:正己烷:乙醚:乙酸 = 80:20:1
    图2 油红O染色方法
    图3 秀丽隐杆线虫中基于DHS-3::GFP的脂滴可视化与定量示意图

    1. 发育速率:记录产卵至首卵孵化时间差(TR=Tn-T0)。

    2. 寿命测定:FUDR 培养基培养,每 2–3 天换液,每日统计死亡数直至全部死亡。

    3. 咽泵率:30s 内咽部收缩次数,反映摄食行为;每组分≥3 条线虫,重复3次测定。

    4. 产卵量:单条线虫每日产卵数累计,每组30 样本,重复 3 次。

    5. 体型:Day2/5/9 分别测量体长、体宽,ImageJ 软件量化。


    四、肥胖相关基因与分子机制


    1. 基因检测

    • 转录组测序:Illumina 平台,Hisat2 比对,StringTie 定量,分析差异mRNA/IncRNA/cirRNA/miRNA。|log2FC|>0.138 且 p<0.05为差异 mRNA。

    • qPCR:检测aak‑2、nhr‑49、fat‑5/6/7等核心基因,以 β‑ACTIN 为内参。

    图4 测序分析过程

    2. 核心信号通路(与人高度同源)

    • 胰岛素通路:daf‑2 负调控 daf‑16,抑制该通路减少脂积累。

    • AMPK 通路:aak‑2 激活促进脂分解,依赖 nhr‑49。

    • mTORC1 通路:daf‑15/rsks‑1 促进脂合成,抑制则降脂。

    • 5‑羟色胺通路:tph‑1调控摄食与脂代谢,独立于进食行为。


    图5 抗肥胖机制

    五、结论

    秀丽隐杆线虫凭借遗传清晰、透明易观测、周期短的优势,成为食品活性物质抗肥胖研究的理想模型。本文建立的标准化流程填补食品活性物质抗肥胖线虫实验无统一标准的空白。全流程可重复、可对比,大幅提升实验可靠性;适合于多酚、多糖、萜类、皂苷等各类食品活性成分,为功能性食品研发与机制解析提供支撑

    论文链接: https://doi.org/10.1002/agf2.70013

    期刊简介AgriFood是国际食品营养与安全协会(IADNS)旗下第7本国际期刊,作为Food FrontierseFoodFood Safety and HealthFuture Postharvest and FoodFood BiomacromoleculesFood Chemistry International的姊妹刊,由全球知名出版集团Wiley负责出版。期刊汇聚国际一流的编辑团队,聚焦食品营养、食品安全、食品加工与可持续发展等前沿方向,涵盖农业科学与食品科技的交叉创新研究,致力于打造农业食品领域的高水平学术交流平台,推动全球食品体系的健康与可持续发展。

    期刊主页https://iadns.onlinelibrary.wiley.com/journal/30669448



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