顶刊解读 | Nature:华大智造MGISEQ-2000助力线粒体编辑器DdCBE的核脱靶编辑机制研究及其特异性改进

2023-04-12 11:49:52, 赋能科研的 深圳华大智造科技有限公司





2022年5月21日,北京大学伊成器团队的一项研究成果在线发表于Nature,题为“Mitochondrial base editor induces substantial nuclear off-target mutations”。该研究基于其自身开发的Detect-seq技术,对线粒体编辑器DdCBE在全基因组范围内的脱靶效应进行了探讨,即原本靶向线粒体的DdCBE错误定位在细胞核中进而导致核基因组内广泛的脱靶编辑,详细阐明了其脱靶机制并提供了特异性优化方案。其中,华大智造MGISEQ-2000测序平台为研究提供了可靠的测序数据。



要点概览

1. 研究基于Detect-seq技术发现DdCBE存在广泛的线粒体及核基因组脱靶编辑效应。

2. 研究表明DdCBE脱靶编辑可分为TAS依赖型和TAS非依赖型,TAS非依赖性可能与CTCF蛋白有关。

3. 研究提供多种策略可显著降低DdCBE的基因组脱靶效应。


背景

成年人线粒体疾病的发病率约为1/5000,大多数此类疾病与线粒体DNA (mtDNA)突变有着密切关系,而对于mtDNA突变引发的严重病症,有效的治疗方案极少且无治愈案例1。为此,科学家开发了多种基因治疗策略以应对此挑战,其中有研究表明,线粒体编辑器DdCBE可以精确编辑mtDNA而不引起双链断裂,该方法不会导致mtDNA拷贝数的降低,特别是在mtDNA高突变负荷的情况下1,其工作原理如图1所示2


然而,DdCBE作为一种很有前途的线粒体治疗方法,其潜在的脱靶效应仍然缺乏有效的综合性研究。有研究报告了DdCBE在mtDNA上有不同程度的脱靶编辑,而基于核假基因的结果显示其无核DNA脱靶效应3,但是DdCBE在全基因组范围内的特异性仍未可知1



图1:mtDNA修复过程中DdCBE介导mtDNA精准编辑的基本原理


结果分析


本研究将五种DdCBEs转染入人类HEK293T细胞中,并利用Detect-seq技术研究DdCBE在全基因组范围内的脱靶效应。研究发现,在准确高效的编辑相关靶向位点之外图2B),五种DdCBEs在mtDNA上均有不同程度的脱靶效应,而在细胞核基因组方面,采用Detect-seq技术针对五种DdCBEs分别检测到了几十到近千个核基因组脱靶编辑位点图2C),相关结果通过高深度靶向测序获得了验证1。随后该研究通过对其中一种编辑器进行原位ChIP-seq杂交技术,以探究该蛋白在核基因组范围内的潜在结合位点,在相关结合位点中共发现137个脱靶编辑位点图2D)


图2:DdCBE在核基因组范围内可引起广泛的脱靶编辑。A,利用Detect-seq检测DdCBE在基因组范围内脱靶效应的示意图;B,利用Detect-seq检测到的ND6-L1397N的精准编辑位置;C,利用Detect-seq检测到的五种DdCBEs在核基因组范围内不同染色体上的脱靶位点展示;D,ND6-L1397N的原位ChIP-seq结果。



研究构建了一系列DdCBE蛋白变异体并利用Detect-seq技术进行相关编辑表现的研究(图3A)1,发现有些核基因组脱靶位点是TAS非依赖性的(图3C,3D)。值得注意的是,这一类型的脱靶编辑位点在split-DddA半分子脱氨酶活性部分或全部消失后也会伴随消失,显示出其对完整脱氨酶活性的高度依赖性。


在对TAS非依赖性脱靶编辑的进一步了解中发现,相关脱靶位点的下游~10bp处,有与CTCF蛋白的结合基序几乎一致的序列特征,此类脱靶位点暗示其可能与CTCF存在关联,通过CTCF蛋白以及cohesion蛋白的ChIP-seq公共数据平台分析也发现其与TAS非依赖性位点高度重合(图4A)1


图3:DdCBE在核基因组范围内引起脱靶编辑的机制研究。A,不同DdCBE蛋白变异体组合的结构示意图;B,ND6-L1397N中所有TAS依赖性核基因组脱靶编辑位点的Detect-seq结果展示;C,ND6-L1397N中所有非TAS依赖性核基因组脱靶编辑位点的Detect-seq结果展示;D,ND6-L1397N中两处非TAS依赖性核基因组脱靶编辑位点的结果展示

图4:DdCBE的TAS非依赖性脱靶编辑位点富集于CTCF蛋白的结合位点。A,CTCF、NIPBL以及SMC3(Cohesin的亚基之一)的ChIP-seq的热图,可见CTCF以及SMC3与DdCBE的TAS非依赖性脱靶编辑位点高度重合;B,C,ND6-L1397N转染的HEK293T细胞的免疫印迹实验显示DdCBE与内源性CTCF蛋白有相互作用。


研究设计了三种不同的策略以达到抑制相关核基因组编辑活性的目的(图5B),测试结果表明三种策略均可提高DdCBE编辑特异性(图5C):

策略一:在DdCBE蛋白上加上核外运信号以抑制DdCBE在细胞核内的定位。该策略显著降低了DdCBE的核基因组脱靶编辑水平,对线粒体基因组非特异性编辑的程度无大影响。

策略二:表达一种定位于细胞核且可抑制DdCBE编辑活性的DddIA蛋白。该策略极大程度降低了DdCBE的核基因组范围内脱靶编辑,且线粒体基因组非特异性编辑的程度也有降低。

策略三:对DddAtox进行突变筛选,以获得DNA结合力降低的突变体。该策略对于降低TAS非依赖性脱靶编辑的程度较弱,能够降低线粒体基因组非特异性编辑的程度。

图5:DdCBE编辑特异性的提高思路。A,DdCBE脱靶编辑的原理图;B,为提高DdCBE的编辑特异性所设计出的三种改进思路;C,基于三种设计思路所获DdCBE蛋白变异体与原蛋白的脱靶编辑效果对比比较图。

总结
本研究使用的多种方法,包括Detect-seq、靶向高深度测序、ChIP-seq、ATAC-seq等在内都需要高通量测序以获取可靠的实验数据,其中,华大智造MGISEQ-2000发挥了重要作用。MGISEQ-2000高通量测序平台能够极大地降低测序成本,同时得益于华大智造的DNBSEQ非线性扩增技术,MGISEQ-2000可以保持约2%-3%的低冗余度,为您的科学研究提供理想工具。


特别鸣谢

伊成器 教授  北京大学生命科学学院

研究方向:致力于DNA/RNA修饰及去修饰的生物学通路、功能和机制研究。为了实现这一目标,实验室综合运用包括化学生物学、表观遗传学、核酸化学、细胞生物学、生物化学、基因组学和结构生物学等多学科手段,旨在揭示核酸表观遗传修饰的新颖功能和调控机制。
实验室官方网站:http://yilab.org.cn/

人物荣誉:
中组部万人计划领军人才,2019
国家自然科学基金委杰出青年科学基金项目,2018
科技部中青年科技创新领军人才,2018
国家自然科学基金委优秀青年科学基金项目,2015


参考文献:
1. Lei, Z. et al. Mitochondrial base editor induces substantial nuclear off-target mutations. Nature 606, 804-811, doi:10.1038/s41586-022-04836-5 (2022).
2. Victoria A. Khotina, A. Y. V., Mariam Bagheri Ekta ,Vasily N. Sukhorukov and Alexander N. Orekhov. Creation of Mitochondrial Disease Models Using Mitochondrial DNA Editing. Biomedicines 11, doi:org/10.3390/biomedicines11020532 (2023).
3. Mok, B. Y. et al. A bacterial cytidine deaminase toxin enables CRISPR-free mitochondrial base editing. Nature 583, 631-637, doi:10.1038/s41586-020-2477-4 (2020)



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