2026-04-07 10:39:35, 三亚珊瑚礁生态 青岛星赛生物科技有限公司
徐健 研究员
徐健,中国科学院青岛生物能源与过程所先进生物制造研究室主任、单细胞中心主任;山东省能源生物遗传资源重点实验室主任。兼任国家基金委生命科学部第九届专家咨询委员会委员、mSystems 和 mLife 等期刊的创始编委。
在Science、Cell Host Microbe 等顶级期刊发表近两百篇论文,被引约两万次(H 指数 68),主持国家重大科学仪器、重点研发计划、基金委杰青等多项重点项目。带领团队提出拉曼组(ramanome)等单细胞代谢表型组学概念,发明高通量单细胞流式拉曼分析/分选、拉曼分选耦合测序/培养等核心技术,开辟了免荧光标记、活体、高内涵、高通量、基于单细胞原位代谢功能的细胞及酶功能筛选路线,广谱适用于微生物、动植物与人体细胞。
其团队研制并产业化了“拉曼组”科学仪器与工业仪表(FlowRACS、RAMS、DCP、RamanEye 等),服务于微生态研究、微藻分子育种、细胞工厂筛选、生物资源挖掘、生物过程监控等广阔领域,原创装备更支撑着单细胞原位代谢图谱(iMAPS)国际科学计划,共同推动“细胞原位代谢功能、随时可检可选可养”的愿景。
拉曼组学技术突破传统研究局限,实现免荧光标记、活体、高通量的单细胞代谢检测,可精准捕捉微生物的原位代谢状态。
iMAPS 国际科学计划构建全球微生物代谢监测网络,已在全球部署超过60个探测点,助力微生物组的原位挖掘与功能解析
核心技术(FlowRACS、DCP等)可高效解决目标功能菌“难培养、原位功能难验证”的痛点,实现“先筛选、后培养”的高效研究模式,效率提升数百倍。
拉曼组学可精准解析微生物共生体系的代谢互作,追踪代谢物跨物种流动,为微生物组功能研究、资源挖掘提供直接实验依据。
未来将聚焦技术产业化与全球合作,推动拉曼组学技术在微生物组研究、生物资源挖掘中的规模化应用,助力生物智造发展。
利用元拉曼组学手段
研究共生关系的几点思考
全球珊瑚礁的衰退凸显了解析珊瑚在环境胁迫下增强抗性机制的迫切性。珊瑚作为由宿主与共生微生物构成的全生物体系,其与共生微生物的动态互作是适应环境胁迫的关键,而共生细菌的群落重构被认为是珊瑚全生物适应环境的重要机制。传统研究方法难以突破 “难培养、功能难原位验证” 的瓶颈,无法精准捕捉单细胞水平的代谢动态,制约了珊瑚及各类微生物共生关系与功能的深入研究。
徐健研究员的报告围绕元拉曼组学技术的创新应用展开,系统分享了如何利用单细胞拉曼分析、分选、测序与培养等核心技术,解析微生物原位代谢功能;更以珊瑚共生体系为研究模式,与傅鹏程教授等合作,构建了珊瑚共生体单细胞代谢图谱解析的方法学框架,为珊瑚共生关系研究、海洋生态保护及微生物组资源挖掘提供了全新技术方案。
传统研究的局限:为何元拉曼组学成为共生研究新利器?
从微生物学发展历程来看,纯培养方法难以还原微生物的原位功能,宏组学技术仅能预测功能且具有破坏性,荧光标记方法存在局限性,均无法实现“活体、原位、精准”的单细胞代谢检测。
在微生物组研究中,少量环境样本中就含有数十亿个微生物,传统方法不仅效率低下(筛选一株功能菌株可能需要数月),更难以捕捉微生物群体中的代谢异质性,无法解析不同微生物在共生关系中的具体角色。
因此,如同人类体检需要精准监测身体状态,微生物也需要“代谢体检”——在不破坏细胞活性的前提下,实时、原位探测每个细胞的代谢功能,这正是拉曼组学技术的核心价值所在。
拉曼组学:解锁微生物世界的“核心钥匙”
拉曼组学以拉曼光谱为核心,利用不同化合物的特定拉曼光谱特征,实现对单细胞内代谢物的精准识别与定量分析,具有三大核心优势:一是免荧光标记,不损伤细胞,可实现活体检测;二是单细胞精度,能捕捉细胞间的代谢异质性;三是高通量,每秒可检测数个或数百个细胞,大幅提升研究效率。
徐健研究员介绍,拉曼组学就像为每个微生物配备了“专属身份证”,通过检测其拉曼光谱,可快速判断微生物的物种类型、代谢活性、抗逆能力,以及是否能合成目标产物(如类胡萝卜素、DHA等),甚至能追踪代谢物在不同微生物之间的流动轨迹。
技术代际演进:从“难培养”到“可检可选可养”
随着拉曼组学技术的不断突破,结合合成生物学、人工智能等技术,微生物组研究已从“不可培养-难验证”走向“可解析-可验证-可工程化”。针对微生物组研究,徐健团队构建了完整的技术体系,实现了“原位代谢筛选-单细胞分选-培养验证-机制解析”的一站式研究,彻底打破了传统研究的局限。
同时,iMAPS 国际科学计划正在构建全球分布式微生物组代谢监测网络,计划两年内在全球建立70个探测点,每个探测点配备拉曼组学仪器,实现对海洋、土壤等环境中微生物代谢功能的实时监测,为全球微生物研究、气候变化应对提供数据支撑。
论坛现场照片
环境功能微生物的高效挖掘:针对环境中的环己烷降解菌、聚磷菌等功能微生物,利用拉曼组学技术,无需涂平板培养,直接对环境样本进行原位筛选,快速分选具有目标代谢功能的单细胞,后继可直接进行“单孔单细胞”的培养,或通过数字菌落挑取仪(DCP)进行高密度并行化的进一步“边养变筛”。这些“先筛后养”或“边养变筛”的技术手段,一周即可完成“先养后筛”传统策略两个月的工作,从而快速实现“原位菌原位用”。
微生物代谢异常的精准监测:通过拉曼光谱可快速区分正常代谢与异常代谢的微生物细胞,在细胞形态发生变化前,就能捕捉到代谢谱的异常变化,结合主成分分析(PCA),可精准实现微生物代谢状态的早期监测,为微生物培养、生物过程调控提供支撑。
微生物共生体系代谢互作解析:利用稳定同位素标记拉曼单细胞光谱(SIP-SCRS)技术,追踪代谢物在不同微生物细胞之间、在微生物细胞与珊瑚宿主细胞之间的流动,清晰解析微生物共生体系的代谢互作网络,明确不同微生物在共生关系中的功能定位,为微生物共生机制研究提供了全新依据。
高值产物菌株的快速筛选:针对高产DHA的海洋微生物(如破囊壶菌),利用拉曼流式细胞术(FlowRACS),高通量筛选高DHA含量的突变体菌株,将传统两年的筛选周期压缩至两天,效率提升近百倍,筛选出的菌株已投入工业生产,为海洋生物资源高值化利用提供了技术支撑。
区分不同类群的核心原理是它们细胞壁、细胞膜上的化合物存在差异,对应的拉曼光谱特征也不同,结合细胞形态大小(通过明场观察),可实现全自动区分。对于细菌,目前针对特定微生物已能实现属、种水平的区分,针对常见益生菌的区分准确率可达95%以上。
核心挑战在于拓展拉曼光谱数据库的范围,对于自然界中大量难培养的未知微生物,需要通过与宏组学、质谱等技术结合,逐步完善数据库,提升区分精度。
拉曼组学主要检测细胞内的拉曼敏感物质,只要能检测到特定的拉曼峰,就能追溯到对应的一类代谢物。其优势在于拥有庞大的化合物拉曼数据库,可通过光谱对比,推断细胞内的代谢物种类,且能实现活体、单细胞精度的检测,零点一秒就能完成单个细胞的代谢检测,远快于质谱等传统方法。
目前,我们正探索将拉曼分选与质谱分析结合,进一步完善代谢物通量的定量分析,未来将能提供更精准的代谢通量数据。
只要光学显微镜能看到的细胞,基本都能通过拉曼组学技术分选,利用RAMS仪器,最小可检测100纳米的细菌(需荧光辅助标记以在显微镜下用光镊抓住目标细胞),最大可分选50微米的细胞。
对于拉曼敏感度低的目标物质,核心解决方案是与探针设计技术结合,通过针对性设计探针,放大目标物质的拉曼信号,提升检测灵敏度。我们非常欢迎与相关领域专家合作,共同开发针对特定代谢物的检测方案。
这正是拉曼组学的核心优势之一。我们可以通过化合物拉曼数据库,对比未知微生物的拉曼光谱,根据化学键特征推断代谢物类型;同时,无需培养,直接分选具有独特代谢特征的未知活体细胞,再通过测序或培养等技术解析其基因组和功能,实现“功能导向”的未知资源挖掘,打破了传统“先培养、后研究”的局限。
文中涉及的“区分准确率95%以上、全球60+探测点”等数据,均为报告及相关研究中引用的统计口径整理。相关技术参数、研究成果、论文信息等,以徐健研究员团队发表的原始文献、PPT及权威数据库为最终依据。
转载自:三亚珊瑚礁生态研究所
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