星赛生物 RAMS 助力海南大学破译珊瑚共生密码

全球变暖引发的海水升温，正让珊瑚礁生态系统遭遇严重白化危机。气候变化引起的异常升温导致珊瑚、虫黄藻及共生微生物之“珊瑚全共生体”失衡甚至崩溃，因此，深刻理解共生成员间互作机制，对于维持营养代谢稳态、修复珊瑚生态系统、保护海洋生态多样性具有重要基础。

研究团队对两类虫黄藻开展长期热驯化，通过逐步升温培养，成功获得两株稳定耐热驯化株。

借助单细胞拉曼光谱技术对比分析，发现热胁迫下普通虫黄藻的蛋白质、碳水化合物、油脂等代谢信号显著下降，而耐热株的蛋白质、油脂代谢信号明显升高，代谢差异清晰可辨。这证实代谢表型可作为耐热驯化筛选依据，研究中发现部分虫黄藻具有 “高淀粉积累” 特征，也为后续耐热突变体筛选与关键形状追踪提供了潜在靶点。

珊瑚全共生体的稳定，共生细菌功不可没。

研究团队结合宏基因组测序和体外实验，从珊瑚微生物群中筛选出关键鼠尾菌—— 它与珊瑚、虫黄藻紧密共生，还能显著增强虫黄藻的热、光耐受性，是珊瑚微生态的 “有益菌”。

为解析其与耐热虫黄藻的物质交换机制，研究人员用 ¹⁵N 标记鼠尾菌、¹³C 标记两种耐热虫黄藻，结合稳定同位素标记与单细胞拉曼光谱技术，通过追踪光谱特征峰变化，解析共生细菌与两株虫黄藻之间的碳、氮元素循环。

研究发现有趣规律：鼠尾菌与 E 系虫黄藻的代谢交换以氨基酸类物质为主；与 C 系虫黄藻交换效率更高，除氨基酸、碳水化合物的交换外，还存在核酸类化合物双向转移。这说明细胞间代谢物交换的方向和时间顺序，可能是影响共生代谢效率的重要因素，为构建高效珊瑚共生体系指明方向。

创新原位检测方法，追踪珊瑚白化代谢轨迹

珊瑚组织结构复杂，不破坏样本又能精准观察其白化代谢变化，是长期以来的研究难点。本研究首次建立了基于元拉曼组的原位代谢物检测流程。

团队通过优化样本制备，避开直接检测的热损伤、石蜡切片的信号干扰，实现对珊瑚组织内蛋白质、脂质等关键物质的原位、无损、精准检测。借助这一方法，清晰发现珊瑚白化代谢规律：白化程度越重，核心营养物质代谢信号越低，珊瑚最终因能量和营养匮乏死亡，这为判断白化程度、制定修复方案提供了重要代谢学依据。

元拉曼组手段检测珊瑚的代谢表型

在此基础上，研究提出微生物辅助的全共生体重构方法学框架：向白化的风信子鹿角珊瑚引入标记后的两种耐热虫黄藻和鼠尾菌，在实验室水平上完成共生体重构，观察珊瑚的白化恢复并利用元拉曼组手段检测其代谢表型。

实验结果显示，尽管短期内珊瑚白化恢复的外观变化不明显，但引入的两种耐热虫黄藻和鼠尾菌，能调控珊瑚组织生化组成，不同组合修复效果各有侧重：

用元拉曼组手段解析单细胞精度的珊瑚-虫黄藻-共生细菌间碳元素、氮元素代谢互作图谱

本研究离不开元拉曼组技术的全程助力：从虫黄藻耐热表型筛选、微生物碳氮交换追踪，到珊瑚白化原位检测、修复效果定量评估，这项技术凭借原位、无损、单细胞分辨率、可定量的优势，让原本难以捕捉的微生物动态代谢过程清晰可测，成为破解珊瑚共生研究难题的关键工具。

而其应用远不止于此，在微生物育种、环境生态修复、海洋生物研究等领域，它都能为微观代谢研究提供精准支撑，助力解锁更多微观生命奥秘。

此次研究不仅加深了对珊瑚全共生体跨界代谢互作的理解，更为全球珊瑚礁保护与修复提供了全新实验依据和理论参考。随着微观检测技术的发展，相信未来我们能找到更多守护海洋生态的方法，为保护海洋生物多样性贡献科研力量。