2025-10-10 16:08:13, 安捷伦科技 安捷伦科技(中国)有限公司
在“双碳”目标与可持续制造需求的推动下,一碳(C1)分子(如甲醛、CO₂、甲醇)的生物转化成为合成生物学领域的研究热点——它既能减少碳排放,又能将廉价碳源转化为乙醇醛(GALD)、二羟基丙酮(DHA)等高附加值平台化学品,为医药、材料等行业提供绿色原料。
一碳生物制造的工业化进程长期受限于关键酶(如乙醛酸合酶 GALS)催化效率低、缺乏高效筛选方法等瓶颈。近期,中国科学院深圳先进技术研究院司同教授团队在 ACS Synthetic Biology 发表的研究论文“Mass spectrometric screening for improving enzymatic conversion of formaldehyde into C2 and C3 products”[1],创新性地将安捷伦 RapidFire 高通量液质联用技术与酶工程、自动化平台结合,构建了一套“快速筛选-高效改造”的整合方案,成功突破了甲醛酶促转化的筛选瓶颈,为一碳生物制造的酶工程改造提供了全新范式。
专家解读:
一碳生物制造的“酶”瓶颈与技术破局
司同教授团队长期聚焦合成生物学与酶工程领域,尤其在一碳代谢途径改造、高通量筛选技术开发方面成果显著。此次研究针对一碳生物制造的核心痛点展开:
“甲醛作为高活性 C1 中间物,可在 GALS 催化下缩合生成 C2(GALD)、C3(DHA)产物,但天然 GALS 催化效率低,且传统筛选方法无法满足大规模突变体优化需求——色谱法(HPLC/GC)定量准确但每样本需 20 分钟,分光光度法通量高却易受结构相似分子干扰。”
团队指出,解决这一问题的关键在于构建“优化宿主-高通量检测-突变体筛选”的闭环体系:既要通过基因编辑减少宿主代谢干扰,更要开发兼具“高选择性、高速度、准确定量”的检测技术。而安捷伦 RapidFire 液质联用技术的引入,恰好为高通量筛选提供了核心工具支撑。
研究挑战:
从“底物浪费”到“筛选低效”多重困境
在正式开展 GALS 改造前,团队面临三大核心挑战,这些也是一碳生物制造领域的共性难题:
宿主内源代“抢底物”,目标产物产率低
大肠杆菌作为常用的微生物底盘,其内源基因(如 frmA、dhaK)会将甲醛(FALD)转化为副产物甲酸(FA),导致底物浪费——野生型菌株中 FA 积累量高,GALD 产量仅 97.6mg/L,且 DHA 因与 FA 色谱峰重叠,难以准确定量。
传统筛选方法“两难全”,无法支撑酶改造
色谱法(HPLC):虽能准确区分 GALD、DHA 与 FA,但单次分析需 20 分钟,若要筛选上百个 GALS 突变体,耗时长达数天,效率极低;
分光光度法:虽能实现 96 孔板高通量检测,但 GALD、DHA 的检测依赖不同显色反应,且甲醛残留会导致 DHA 检测干扰率高达 48.5%,定量准确性差。
GALS 突变体“大海捞针”,需兼顾通量与准确性
GALS 的催化活性与 7 个关键氨基酸残基(Ser26、Gly109 等)密切相关,要实现酶活性提升,需构建覆盖这些位点的饱和突变库(约 133 种突变体)。传统方法要么“慢得无法筛选”,要么“不准得筛错方向”,难以高效找到优势突变体。
RapidFire 技术:
10 秒/样本!高通量液质联用破解筛选困局
图1. 安捷伦 RapidFire 400 高通量液质联用系统
为突破上述瓶颈,团队将安捷伦 RapidFire 400 高通量液质联用系统作为核心检测工具,结合化学衍生、自动化平台,打造了一套针对 GALS 突变体的高通量筛选方案(图 2),从“速度、选择性、准确性”三个维度解决传统方法的痛点:
化学衍生+MRM 模式:消除干扰,准确定量
针对 GALD、DHA 分子量小(易受基质干扰)的问题,团队采用 10mM MBTH(3-甲基-2-苯并噻唑腙盐酸盐)对样品进行衍生化处理——MBTH 可与 GALD、DHA 特异性结合,形成稳定的衍生物(GALD-MBTH:m/z 222→177;DHA-MBTH:m/z 252→177)。
通过安捷伦 6470 三重四极杆质谱的多反应监测(MRM)模式,可精准捕捉目标衍生物的特征离子,彻底消除甲醛、甲酸等杂质的干扰,定量准确性与 HPLC 相当(R²>0.998)。
在线 SPE+自动化:10秒/样本,通量提升 120 倍
安捷伦 RapidFire 系统的在线固相萃取(SPE)功能是高通量的核心:系统可自动完成“样品上样-溶剂洗涤-分析物洗脱-质谱检测”全流程,无需手动前处理;同时省去传统 HPLC 的色谱分离步骤,将单次样品分析时间从 HPLC 的 20 分钟压缩至 10 秒,通量提升 120 倍。
即使对 96 孔板的突变体样品进行批量分析,也能在 1 小时内完成所有检测,大幅缩短筛选周期。
与自动化平台兼容:实现“克隆-筛选-分析”全流程无人化
团队将 RapidFire 液质系统与机器人生物铸造厂(Robotic Biofoundry)对接:机器人自动完成 GALS 突变库构建(PCR、吉布森组装)、大肠杆菌转化、全细胞催化,随后直接将上清液送入 RapidFire 系统检测——整个过程无需人工干预,既避免人为误差,又进一步提升筛选效率。
图2. 基于 RapidFire MS 的 GALS 突变体自动化高通量筛选方案
高通量带来的“双重突破”:
从高效突变体到工业化潜力
借助 RapidFire 技术的高通量优势,团队成功完成了 GALS 突变库的筛选与改造,实现了“酶性能提升”与“一碳转化效率优化”的双重突破:
快速筛选到“超优”GALS 突变体
针对 GALS 的 7 个关键残基,团队构建了 117 个有效突变体,通过 RapidFire 系统快速筛选,最终获得 2 个性能显著提升的突变体:
G109I 突变体:生成 GALD 的催化常数(kcat)较野生型提高 3.7 倍,意味着单位时间内可催化更多甲醛转化为 C2 产物;
G109F 突变体:对 DHA 的米氏常数(Km)降低 5 倍(从 351.1mM 降至 72.2mM),对底物亲和力大幅提升,产物分布向 C3(DHA)偏移。
这些突变体的获得,为一碳生物制造提供了高效酶元件,直接推动甲醛转化效率提升。
建立可推广的“一碳酶改造”范式
更重要的是,团队通过分子动力学模拟验证了突变机制:如 G109F 突变会缩小 GALS 活性口袋体积(减少 66.88 ų),增强与反应中间体的结合稳定性,从而偏向 DHA 生成——这一机制为其他一碳转化酶(如甲醛裂合酶、甲醇脱氢酶)的改造提供了理论指导。
同时,RapidFire 系统的宽线性检测范围(GALD:1.56-250 mg/L;DHA:1.56-500 mg/L)可覆盖不同突变体的产物浓度,无需频繁稀释样品,进一步保障了筛选的稳健性。
技术启示:
RapidFire 助力合成生物学“快迭代”
司同教授团队的研究不仅解决了 GALS 改造的筛选问题,更为合成生物学领域的高通量研究提供了重要启示:
在一碳生物制造、天然产物合成、工业酶改造等领域,“快速筛选”是加速成果转化的关键——安捷伦 RapidFire 液质联用技术凭借“秒级的速度、准确定量的选择性、自动化兼容能力”,可成为连接“突变体构建”与“性能优化”的核心桥梁。
未来,随着该技术与 AI 设计、自动化平台的进一步融合,有望实现“突变体设计-筛选-机制解析”的全流程智能化,推动一碳生物制造、医药中间体合成等领域的工业化进程加速落地。
参考文献:
Luo Y, Fu L, Chen J, et al. Mass spectrometric screening for improving enzymatic conversion of formaldehyde into C2 and C3 products[J]. ACS Synthetic Biology, 2025, 14(10): 2718-2728.
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