2026-04-29 15:45:56 江苏三黍生物科技有限公司
糜子稠酒是中国传统的发酵型养生米酒,富含多种营养与风味物质,赋予产品独特风格,尽管糜子稠酒香气多样性突出,但其发酵过程中微生物群落的演替规律及功能作用尚不明确。
2025年11月,西北农林科技大学冯佰利教授课题组,在Food Research international杂志上发表了题为“Flavor quality during fermentation of the specialty product proso millet (Panicum miliaceum L.) thick wine: Insights from microbiome and metabolomics analyses”的文章,本研究探究了糜子稠酒发酵过程中微生物群落、理化特性与风味物质间的关联,为从微生物群落水平与微生物强化角度调控糜子稠酒风味提供了理论依据。
糜子稠酒
理化指标、有机酸靶向代谢、风味组学、16S rRNA扩增子测序
发酵特性(pH、总酸、还原糖、淀粉、蛋白质含量)如图1所示。糜子稠酒pH从S1至S4阶段显著下降,S5阶段略有回升;总酸随发酵时间显著升高,S5阶段达9.89g/kg。这一变化与糖类转化为有机酸相关,有机酸积累导致pH降低、总酸升高。适宜的酸度可起到缓冲平衡作用,提升糜子稠酒的醇厚顺滑口感;酸度不足则不利于微生物生长代谢,影响酒品品质与稳定性。发酵过程中淀粉与蛋白质含量持续下降,S1至S5阶段,淀粉从665.93mg/g降至602.72mg/g,蛋白质从8.36g/100g降至7.36g/100g。淀粉与蛋白质是糜子籽粒的主要组分,作为微生物生长代谢的底物。微生物分泌的淀粉酶将淀粉水解为还原糖,还原糖进一步被微生物代谢为乙醇等物质。
α-淀粉酶活性在0小时(S1)至6小时(S2)保持稳定,随后下降。α-淀粉酶与糖化酶将谷物淀粉水解为还原糖,酿造前期还原糖浓度急剧升高。芽孢杆菌属是产α-淀粉酶的细菌属之一。蛋白酶与糖化酶活性在S2阶段达到峰值,随后全程下降,与已有研究结果一致。黄酒发酵过程中提升蛋白酶活性,可显著促进氨基酸生成,进而丰富成品酒的风味层次。
图1. 糜子稠酒发酵过程中发酵参数的动态变化
有机酸是酒类的核心风味物质,主要贡献酸味。酸度决定稠酒的酸感强度,协调风味、提升酒体醇厚饱满感。苹果酸、乳酸、柠檬酸、草酸、琥珀酸含量较高。已有研究表明,乳酸与乙酸是中国黄酒中最重要的有机酸。苹果酸源于三羧酸循环,酸味浓烈锐利,可作为风味调和剂。乳酸是糜子发酵的典型有机酸,随发酵时间持续升高,S5阶段达3537.13 ng/mg。乳酸与乙酸是发酵食品的主要代谢产物,主要通过糖酵解与磷酸酮醇途径生成。柠檬酸、草酸含量先升后降,琥珀酸、丙二酸含量持续上升。琥珀酸由苹果酸经酵母代谢生成,对心血管与肝脏具有潜在保健功效。S5阶段的苹果酸、乳酸、琥珀酸、富马酸含量与S1阶段差异显著,是糜子稠酒风味的关键贡献物质。
表1. 糜子稠酒发酵过程中有机酸化合物含量研究
风味特征(尤其是香气)直接决定发酵酒的整体感官品质。挥发性风味成分主要来源于原料、酒曲与发酵环境。采用 HS-SPME-GC-MS 分析糜子稠酒发酵过程中的挥发性代谢物谱。结果显示,酯类占挥发性物质总量的18.59%,其次为萜类、杂环类、酮类、醇类、醛类,上述物质合计占比超 74%。PCA分析显示,S3与S4样品聚类,S1、S2、S5样品明显分离,表明发酵后期发酵醪的风味物质差异较小,风味多样性主要形成于发酵前期。基于挥发性物质数据的OPLS-DA分析显示,200次置换检验得R²Y=0.99、Q²=0.925,证明模型稳定且预测性良好。
S2 vs S1、S3 vs S2组间差异代谢物数量更多,表明发酵前期反应最剧烈。这些差异代谢物以酯类、萜类、酮类、醇类为主,是糜子稠酒风味的主要贡献物质。KEGG分析显示,挥发性差异代谢物的三大富集通路为氨基酸合成与代谢、萜类生物合成、碳水化合物代谢。发酵前12小时(S1~S3)以淀粉、蛋白质等大分子降解为主;发酵后期则进行倍半萜、三萜、单萜的生物合成,赋予糜子稠酒独特风味,与已有研究结果一致。值得注意的是,α-亚麻酸代谢在三组比较中均显著富集,该通路与脂质调节、免疫增强功能相关。
图2. 糜子稠酒发酵过程中挥发性风味化合物的变化
对差异代谢物进行感官风味注释,以雷达图展示注释数量前十的感官风味。结果显示,不同发酵阶段风味差异显著,果香、浆果香、甜香、青草香、木香、苹果香的差异具有统计学意义。基于前十种感官风味绘制差异风味代谢物热图,这些代谢物主要分为萜类、酯类、醛类、酸类、醇类、酮类、杂环类。其中萜类代谢物数量最多,对糜子稠酒风味贡献突出。
萜类不仅是提供香气与口感的微量成分,还具有保健功效,其生物活性备受关注。本研究中,仅反式-β-法尼烯、顺式-β-法尼烯、(-)-桃金娘醇、2-异亚丙基-5-甲基环己酮、L-莰烯在发酵末期含量升高,多数萜类物质含量下降,于S3阶段达到峰值。共检测到15种酯类物质,其中8种在S5阶段含量更高,这也是S5相较于S4果香、甜香更突出的原因。酯类常作为白酒品质指标,是清香型白酒的核心香气来源。白酒中高比例的醛类赋予其独特酱香,提升产品特色。糜子稠酒中5种醛类物质含量整体下降,仅反式-4-癸烯醛含量升高,与酱香型白酒规律不同。酸类对白酒风味形成至关重要,适宜的酸度可在饮用时起到缓冲作用,储存过程中逐步生成香气酯类。本研究中5种酸类物质含量显著升高,为糜子稠酒带来果香、脂肪香、奶酪香、蜡香、油香。苯乙醇是中国黄酒的核心香气物质,具玫瑰蜜香,在本研究中于S4阶段达到最高值。
图3. 糜子稠酒发酵过程中香气属性的变化
发酵食品品质由原料与微生物代谢活动决定,因此本研究通过测序分析发酵过程中的微生物多样性。PCA结果显示,S2与S3阶段明显分离,表明发酵前6小时进程迅速;S3、S4、S5阶段几乎重叠,说明发酵6小时后微生物群落结构趋于稳定。各发酵阶段特有ASV数量分别为118、226、77、56、73,而5个阶段共有的ASV仅12个,表明糜子稠酒发酵过程中微生物群落变化显著。
采用Chao、Shannon、Simpson指数评估细菌α多样性。Chao指数先升后降,S1、S2阶段显著高于S3、S4、S5阶段;Shannon多样性指数变化趋势与Chao指数一致。该结果与PCA结果相符,证明发酵前12小时(S3阶段)反应剧烈、微生物多样性高。S3阶段乳酸大量积累形成酸胁迫,不利于酸敏感菌生长;同时S2阶段酶活达峰值,加速淀粉与蛋白质水解,导致S3阶段底物消耗,限制微生物增殖。这些因素共同导致S2阶段后微生物多样性下降。
图4. 糜子稠酒发酵过程中微生物多样性分析
门水平上,糜子稠酒细菌以厚壁菌门为主,五个阶段平均相对丰度分别为 62%、64%、99%、100%、100%,与已有研究结果一致。发酵前期,变形菌门占比小,随发酵进行,厚壁菌门丰度升高,变形菌门丰度降低。厚壁菌门环境耐受性强,成为糜子稠酒发酵过程中的优势微生物。
属水平上,乳杆菌属在五个阶段均占优势,相对丰度随发酵阶段升高,S4阶段达99%。S1~S2阶段,芽孢杆菌属也是主要菌群。芽孢杆菌属广泛存在于各类发酵食品中,是糯米酒、苦荞酒中的核心微生物。作为功能微生物,芽孢杆菌可分泌多种水解酶(淀粉酶、酸性蛋白酶、纤溶酶等),助力米酒风味形成。发酵后期酒精含量升高、氧气浓度降低,芽孢杆菌无法生长。已有研究表明,中国浓香白酒发酵的优势细菌属包括乳杆菌属、芽孢杆菌属、魏斯氏菌属、瘤胃球菌属,其中乳杆菌属为最优势菌属,主导发酵后期细菌群落演替。因此,糜子稠酒的发酵特性与中国浓香白酒相似。
通过LEfSe分析(LDA>4)鉴定糜子稠酒各发酵阶段的生物标志物。S1阶段富集变形菌门、γ-变形菌纲、肠杆菌科、芽孢杆菌属;S2阶段的标志物为梭菌纲、优杆菌目、链球菌科、伯克霍尔德菌目;S4阶段的标志物为厚壁菌门;S5阶段的标志物为乳杆菌属、芽孢杆菌纲。结果表明,糜子稠酒发酵前期菌群更丰富,后期以乳酸菌为主,与前期研究结果一致。
图5. 糜子稠酒发酵过程中微生物群落结构差异
采用方差分解分析(VPA)探究影响糜子稠酒发酵微生物群落形成的关键非生物因子,将环境因子分为发酵参数与有机酸两类,明确不同变量类型对微生物群落的贡献度。结果显示,有机酸是驱动微生物群落形成的核心因子,解释度达 85.6762%。有机酸积累可改变环境pH、抑制酸敏感菌生长,进而调控糜子稠酒各发酵阶段的微生物群落结构。
基于前20大微生物菌属的斯皮尔曼相关系数(|r|>0.6,p<0.05)构建共发生网络,分析糜子稠酒中微生物间的关联。厚壁菌门的节点数、边数与平均度均高于其他菌门,表明厚壁菌门群落内部互作更强。共发生网络显示,边连接节点数前五的菌属为乳杆菌属(18)、梭菌属(18)、肠球菌属(17)、嗜血杆菌属(17)、韦荣球菌属(17)。优势菌属乳杆菌属与其他微生物呈负相关,说明其丰度可抑制其他重要细菌的生长。乳杆菌属可通过两类碳水化合物发酵途径生成乳酸与乙酸,发酵环境中有机酸积累形成酸胁迫,抑制耐酸性较弱的微生物生长,最终形成以耐酸乳杆菌属为主的稳定微生物群落。武夷红曲糯米酒发酵末期,乳杆菌属成为优势菌种,这一现象在发酵食品中普遍存在,源于其耐低pH特性,且可分泌细菌素等抑菌物质,抑制酿造过程中多种微生物(尤其是致病菌与腐败菌)的生长。
采用Mantel检验与RDA分析,明确影响糜子稠酒发酵微生物群落演替的理化参数。各发酵参数与有机酸均与微生物群落结构显著相关,其中酸相关变量相关性最强。乳酸与己酸、丁酸、富马酸、pH呈负相关。已有研究发现,己酸积累会抑制乳酸生成,窖泥中己酸含量随时间升高、乳酸含量降低。相较于S1、S2阶段,S3、S4、S5样品的细菌群落在坐标系中更聚集,表明发酵后期微生物稳定性提升。
发酵参数中,淀粉(R²=0.79,p=0.001)、α-淀粉酶活性(R²=0.80,p=0.001)、总酸(R²=0.77,p=0.001)、蛋白质(R²=0.73,p=0.001)、pH(R²=0.63,p=0.003)与微生物群落结构显著相关。有机酸中,己酸(R²=0.91,p=0.001)、苹果酸(R²=0.86,p=0.001)、丁酸(R²=0.70,p=0.002)、丙二酸(R²=0.60,p=0.003)、乳酸(R²=0.46,p=0.022)与微生物群落结构显著相关。己酸、苹果酸、丁酸与芽孢杆菌属、肠杆菌属、未分类蓝细菌门、肠球菌属、未分类肠杆菌科、克雷伯氏菌属呈正相关;丙二酸、乳酸、总酸与S5阶段优势微生物(乳杆菌属)呈正相关。有机酸积累与总酸升高,使微生物菌群向耐酸性方向演替。综上,有机酸是糜子稠酒发酵过程中微生物演替的核心驱动因子。
发酵过程中形成的风味物质主要由参与代谢的微生物产生。基于斯皮尔曼相关系数绘制热图,分析发酵过程中优势菌群(前10大细菌属)与风味差异代谢物的潜在关联。发酵中后期优势菌属乳杆菌属与萜类、酸类、杂环类物质呈强正相关,证明其是糜子稠酒滋味与风味形成的核心菌群。乳杆菌属在各类发酵食品中可生成挥发性风味物质与有机酸(尤其是乳酸),例如参与传统高粱酒、酸鱼中酯类的合成。而在糜子稠酒中,乳杆菌属主要促进萜类物质生成,萜类贡献木香、甜香、青草香。因此,糜子稠酒的风味从前期果香为主,转变为后期以乳杆菌属主导的萜类木香为主,与香气特征分析结果一致,证明微生物群落演替直接影响香气轮廓。
芽孢杆菌属、肠杆菌属、拟杆菌属、梭菌属、未分类肠杆菌科、罗斯氏菌属、肠球菌属、未分类蓝细菌门、克雷伯氏菌属与5种醛类物质呈显著正相关。芽孢杆菌属与醛类呈正相关符合预期,已有研究证实芽孢杆菌可合成多种酶类(淀粉酶、蛋白酶)及醛类合成相关酶(香草醛酶)。5种醛类物质中,反式和顺式-2,4-癸二烯异构体与甲硫基丙醛的气味活性值(rOAV)均大于1,贡献发酵前期糜子稠酒的果香、青草香、浆果香。芽孢杆菌可生成多种醇类、有机酸、脂肪酸酯,同时与(Z)-4-癸烯酸甲酯、(E)-2-甲基-2-丁烯酸-(Z)-3-己烯酯(酯类)、2-己醇(醇类)呈正相关。肠球菌属可产生酯酶,是多种发酵过程中(尤其是酯类)的核心产香菌,因此与 (Z)-4-癸烯酸甲酯(rOAV>1)、(E)-2-甲基-2-丁烯酸-(Z)-3-己烯酯、乙酸壬酯呈正相关。
图6. 糜子稠酒发酵过程中的微生物群落组成及共现模式
图7. 糜子稠酒发酵过程中优势微生物物种(前10名)与关键挥发性化合物的Spearman秩相关性热图分析
本研究系统监测了糜子稠酒发酵过程中微生物群落演替、理化特性与挥发性代谢物的动态变化。发酵过程中,总酸与还原糖含量升高,淀粉与蛋白质含量降低;淀粉酶、蛋白酶活性在S2阶段达到峰值。糜子稠酒中苹果酸、乳酸、柠檬酸、草酸、琥珀酸含量较高;萜类、酯类、醛类是发酵过程中贡献香气的主要挥发性差异代谢物。发酵前期,乳杆菌属、芽孢杆菌属、肠杆菌属为优势细菌属;发酵后期,群落向耐酸性方向演替,乳杆菌属成为绝对优势菌属。相关性分析显示,乳杆菌属可促进萜类与酸类物质生成,其余9种优势细菌属则可促进醛类物质合成。后续研究可通过添加一种或多种核心细菌,调控糜子稠酒发酵过程中风味代谢物的积累。本研究结果为糜子稠酒发酵工艺的优化与产业发展提供了参考数据。
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排版:野凌
审核:三黍生物企宣部
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