从原理到实操|深度全解抗体纯化蛋白A亲和层析工艺,收率再上新高度

2023-11-13 11:30:09, 毫厘科技HaoLi 杭州毫厘科技有限公司


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抗体下游工艺流程的概况

近些年单抗市场发展迅速,从2008至2022年,全球生物制品市场份额从17%增长至30%,大约50%生物制品销售额来自于抗体及其Fc融合蛋白。近些年,中国单抗药物市场呈爆发性增长趋势,2022年销售额已达1100亿,预计2023年将突破1500亿,而国产单抗药物也陆续实现突破,近些年不断有新的单抗药物上市。

但在单抗快速发展的同时,制药企业也面临着新的挑战。首先是降低生产成本,由于热门靶点有限,可能同一款单抗药物有多个公司在同时研发药物,制药公司面临着激烈的市场竞争,同时由于国家4+7带量采购的政策的发布,迫使药企迫切追求降低生产成本。其次是提高生产效率,除部分热门靶点药物外,大部分靶点药物市场需求量小。最后是产品质量控制,随着中国加入ICH,和国际药品监管体系接轨,对药品质量和生产过程有了越来越严格的要求.


蛋白A亲和层析以及工艺优化

目前单抗在纯化阶段多采用三步层析纯化策略,ProteinA亲和层析因为其高特异性,成为第一步粗纯的首选。

ProteinA是一种分离自金黄色葡萄球菌的细胞壁蛋白,通过Fc片段结合哺乳动物IgG。天然的ProteinA不稳定,将其改造后获得的ProteinA不仅稳定性更好,而且对Fc片段的结合能力更强,非特异性结合更弱。将这种蛋白结合到微球上,便获得了一种能够特异性结合抗体蛋白的层新填料。SpreX ProA系列产品中结合的PeoteinA蛋白是经过改造后的蛋白,可耐受高达0.5M NaOH,实现在使用结束后对填料更加彻底的清洁消毒。

以等电点在8左右的抗体蛋白为例,一般的粗纯流程如下:

培养收获液经澄清过滤或离心分离后去除大的细胞和细胞碎片,再用0.45/0.22um的滤膜过滤,以使样品能够顺利通过而不至于堵塞层析柱,随后便可将进行Pro A亲和层析。层析中用到的所有缓冲液都要用0.45/0.22um的滤膜过滤,尽可能减少不溶性微粒,并降低微生物限度以减少使用过程中填料的损伤。典型的ProA亲和层析步骤包括:



第一步

消毒是为了清洗杂质,排除上一次使用对本次层析的干扰,一般为0.1M NaOH,淋洗2CV后暂停15min。NaOH清洗填料的同时也会对填料造成不可逆的损伤,使用更加耐碱的SpreX ProA系列填料可使填料使用寿命更长。


第二步

平衡是为了洗去NaOH,并将层析柱中的pH、电导等替换为与样品接近的环境,使样品结合更加稳定。建议使用和澄清过滤时相同的平衡缓冲液,并平衡至pH、电导与平衡液相同。


第三步

上样即为将样品流过层析柱。在该过程中,应选择合适的样品保留时间以使目的蛋白有充足的时间和填料中的ProteinA结合,通常建议保留时间4-6min,未结合的杂质流穿。同时,由于培养样品一般粘度较高,上样过程可能会有较大反压,应时刻注意压力,保证在不超过最大压力限制下上样,此限制的优先级应高于保留时间对流速的要求。如压力过大流速过低,解决方法可考虑通过一些手段先降低样品粘性,或考虑使用粒径更大的填料。


第四步

再平衡是使用与上样前平衡时相同缓冲液将上样结束后层析柱中还未流穿的杂质顶洗出来。由于此过程中层析柱里仍然是样品,还会有较大反压,建议在第一个CV时使用同上样时相同的流速,随着样品杂质流穿后续可选择使用更高流速,并直到pH、cond、uv280曲线平稳,一般需要5cv左右。


第五步

洗杂主要洗去填料上非特异性结合的杂质,一般使用pH5.5的缓冲液,并加入添加剂如氯化钠、尿素等,通过高盐来洗去杂质,洗去的杂质主要包括HCP、DNA等。HCP结合在填料上的相互作用中 HCP与单抗之间的相互作用占主要部分,在酸性pH下抗体一般为中性或带正电荷,而HCP大都为中性或带负电荷,从而两者之间容易形成疏水结合或者离子结合,通过中间pH和添加剂的缓冲液淋洗可以洗去一部分HCP杂质。此外,由于不同添加剂作用不同,可以根据实际情况选择合适的添加剂,目前氯化钠是最常用的,但尿素、精氨酸等由于其不同的除杂机制,也被越来越多的使用。


第六步

平衡为pH5.5的洗杂时未加入添加剂的缓冲液,目的是将柱子内缓冲液替换为低盐条件,以防止洗杂缓冲液中加入的添加剂进入洗脱样品中,对蛋白稳定性造成不利影响,同时也能洗去部分因疏水作用结合的HCP。


第七步

洗脱一般使用pH3.5左右的与上一步平衡时相同缓冲体系的缓冲液,利用低pH将目的蛋白洗脱,并在收集口收集样品。若有相关需求,可在此时进行低pH病毒灭活,若无相关需求,可直接用1M Tris-HCl,pH9.0调pH至蛋白稳定的范围,一般为5.5。回调过程中会出现沉淀,一般是HCP和核酸,也会有少量单抗聚集。再经过深层过滤除去沉淀后HCP和核酸通常可降低至100ppm以下。有研究指出,在低pH下抗体蛋白会将疏水中心暴露出来从而导致聚集,而更加缓慢的调节pH,给蛋白更多的结构变化时间能够有效降低单抗的聚集。此外,也可以在洗脱缓冲液中加入适量氯化钠从而可以在更加温和的pH下将蛋白质洗脱,或者加入适量乙二醇以减弱分子间疏水作用减少聚体的形成。


第八步

清洗一般使用1M HAc或0.1M Critic acid,目的是使用更低的pH将填料上未洗脱的其他杂质洗脱下来。清洗的溶液pH建议大于2,以减少填料的损伤。如果仍然无法清洗干净,可尝试使用盐酸胍、异丙醇清洗。


第九步

平衡是为了在第九步的氢氧化钠消毒前有一个缓冲,否则酸碱直接中和会对填料有较大损伤。


第十步

消毒目的是利用0.1M NaOH的高pH将填料上的脂蛋白、脂质和核酸洗脱,同时对填料进行杀菌消毒,灭活细菌、病毒和内毒素。


第十一步

平衡是为了将NaOH清洗干净,防止对填料造成损伤。若无后续实验,则可将填料保存于20%乙醇中。


亲和层析工艺优化

样品经过一步层析后一般单体纯度可达95%以上,收率为90%左右,主要杂质为聚体、电荷异质体、HCP、DNA和ProteinA。其中聚体和电荷异质体等在亲和层析阶段优化空间不大,另一方面是这些杂质在后续离子层析阶段可以去除,因此一般不作为亲和层析工艺优化关键点。Protein A是由于填料配基脱落所导致,一般只需维持在较低水平即可,而且也可以在离子层析阶段去除,但其含量可作为填料自身性能变化的参考。因此,亲和层析阶段的工艺参数优化应重点关注收率、HCP、DNA和ProteinA.

样品收率与样品上样载量密切相关。高流速、高载量是目前亲和层析填料发展的趋势,选择更高载量的填料以及合适的实际上样载量能够获得更高的收率,同时降低生产成本。毫厘科技的SpreX ProA D80能够在4min保留时间下达到60 mg hIgG/mL以上的动态载量,其平均粒径为80un,能够实现0.2MPa下500cm/h的流速,让生产过程更加高效。SpreX ProA H60则粒径更小,载量更高,为工艺开发带来更多选择。填料的高动态载量还应结合实际的工艺参数,过高或过低的上样载量都会导致收率降低,因此从低载量填料更换为高载量填料,还应进行对应的工艺优化实验。随着亲和层析填料使用次数的增加,其微球表面附着的杂质也会越来越多并降低目标蛋白的载量。此外洗脱pH、收集峰位置也会影响收率,高的洗脱pH和窄的收集峰会降低收率,但可以提高产品质量;低的pH和宽的收集峰会提高收率,但会使产品质量降低。工艺条件的优化目标是在质量和收率之间的平衡,即在保证质量的情况下尽可能提高收率。

目前抗体蛋白主要采用真核细胞胞外表达,HCP和DNA会在培养末期或离心过程中细胞死亡后释放出来,通常在亲和层析前其含量可能高达几十万甚至上百万ppm,而在亲和层析后则下降到几百ppm。HCP和DNA在pH5.5左右时一般带负电荷,可回调pH后通过深层过滤去除,若对质量有更高要求也可通过阴离子层析去除,同时阴离子层析还能去除核酸和病毒,且由于单抗的阴离子层析通常是流穿模式层析,工艺相对简单,被普遍应用于单抗的纯化。

亲和后样品中含有的ProteinA一般来源于亲和填料配基的脱落,其一方面作为产品杂质应当被控制,另一方面也可作为填料配基脱落程度的参考。使用SpreX ProA系列填料进行亲和层析,Protein A的含量可保持在10ppm以下。一般对填料配基脱落影响最大的因素是CIP阶段的氢氧化钠清洗。为了洗去填料上未洗脱的脂蛋白,灭活内毒素以及控制微生物限度,一般会在层析前和层析后使用0.1M NaOH进行15min左右的消毒,这对亲和层析填料来说是必须的,但会极大影响配基的稳定性,SpreX ProA系列填料使用经改良的Protein A配基,能够耐受0.5M NaOH,增加在0.1 M NaOH下的使用寿命。

以当前纯化工艺发展情况,亲和层析填料通常占据所有层析填料成本50%左右,在当下制药行业整体降本增效的背景下,国产化已成为趋势。毫厘科技全球领先的微流控微液滴成球技术过程可控,并且能够制造出粒径更加均一的微球,使用SpreX ProA系列填料将可能在样品收集阶段的分辨率、收集体积带来更好的表现,从而降低后续纯化阶段生产成本。


填料动态载量测试

填料动态载量测试一般是在上样载量优化或填料寿命验证中进行。使用纯化后的目标蛋白测试不经过层析柱时的uv值,随后上样直至有样品流穿并且uv值达到10%流穿时的uv值,记录上样体积并计算填料载量。在亲和层析工艺优化时,通常样品上样载量定为动态载量的80%左右。在亲和层析填料寿命验证阶段,当动态载量出现明显下降时的使用次数定为寿命终点。


亲和层析中的ProteinA的替代品

为了满足高性价比产品的巨大需求,同时满足严格的质量标准,对生产策略进行了必要改进,人们设计并研究了蛋白A的替代配体。蛋白质G和蛋白质L是已知的与蛋白质A功能相似的配体。蛋白质G由一个多肽组成,多个结合域以圆柱形连接;蛋白G由1个具有多个结合域的单肽组成,来源于G群和C群链球菌。然而,ProteinG比ProteinA没有太大的优势,最重要的限制是洗脱的pH太低,非特异性行为升高,聚集体含量高,稳定性下降,综合成本甚至高于ProteinA 树脂。ProteinL也是由链球菌表达,会与包含特定kappa轻链的抗体特异性结合,由于其高特异性,蛋白L在单抗纯化过程中尚未取代ProteinA。

ProteinA并不能结合所有IgG,而且有的抗体蛋白中并不含有Fc段,因此会有基于ProteinL或其他亲和配体的亲和层析。但这些产品仍需在载量、稳定性等方面改进才能使性能超过基于ProteinA的亲和层析。



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毫厘科技致力于微流控生产型芯片开发,为生命科学微球材料提供高通量数字化生产平台,用于多种类型的纳微级别功能性微球和生物粒子的分选、制造与工业级连续生产,可兼容琼脂糖、无机材料、聚合物等不同材质及不同尺寸不同结构的特殊要求。


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