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瑞士Cytosurge公司多功能单细胞显微操作系统—FluidFM OMNIUM,是将原子力系统、微流控系统、细胞培养系统为一体的单细胞操作系统。主要功能包括单细胞注射、单细胞提取、单细胞分离、单细胞粘附力的测定、生物3D打印等。 FluidFM OMNIUM打开了传统单细胞实验手段无法触及领域的大门。突破了单细胞研究、药物开发、细胞系开发中的障碍,让细胞膜不再成为阻碍单细胞研究的壁垒。 多功能单细胞显微操作系统FluidFM OMNIUM浓缩了FluidFM技术的全部精华,尤其是在自动化程度和操作速度上的提高。它不仅保留了产品在生物学上的能力,更能够将这些功能进行组合来创造更加高效、便捷全新的试验方法。 |
应用领域:
FluidFM OMNIUM大地方便了单细胞水平的研究,尤其适合应用于医疗、单细胞生物学、单细胞质谱、单细胞基因编辑、药物研发等领域。
基本参数:
- 单细胞水平的显微注射、提取、分离以及细胞粘附力测定,全过程通过软件设置自动化完成;
- 全自动进行细胞核、细胞质定位注射;
- 软件自动更换探针更换,无需手动加载;
- 样品台移动精度:XY轴不大于1 nm;Z轴不大于0.2nm;
- 探针力学控制:提供探针当前压力值并绘制曲线;
- 配置高灵敏度液体微流控系统,流体压力控制精度:±0.5 mbar;
设备特点:
| 一体 无需购买 额外设备 | 简易 轻点鼠标 | 可控 所有变量均可 通过软件操纵 |
单细胞注射 无损注入的将不同类型的物质准确注入到细胞质或者细胞核。 每小时可注射>100个细胞。 | |
单细胞提取 提取后细胞仍可存活。
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细胞分离 无论悬浮或者贴壁细胞均可分离或者分选。整个过程对细胞无损伤。 | |
点打印 纳米精度的高密度点打印能够快速建立使用诸如蛋白、DNA等物质 构成生物感应列阵。 | |
纳米光刻技术 打印纳米精度的各种生物分子所构成的复杂图案。 |
单细胞注射——快速、、低损伤
| 更优的CRISPR-Cas转染方式: 能够进行高速、高效地将CRISPR-Cas复合物注入细胞,帮助您克服对于传统方式难转染的细胞基因编辑问题。 |
| 提高质粒的转染效率: 相比于传统的转染方式,FluidFM更加温和、快速,对细胞的损伤更小。 |
| 贴壁细胞均可注射: 对于注射细胞的种类,本产品并没有太多的限制,即使像心肌细胞这样的注射难度很高的细胞也能够胜任。 |
| 注入体积计算: 通过比对注入荧光分子物质的荧光强度计算注入荧光分子的体积。 |
单细胞提取——微量、低创、
活细胞提取 从活细胞中直接提取内容物,并且提取后细胞仍可存活。 | |
电镜成像 相比于传统的裂解方式,FluidFM OMNIUM提取的样本更为干净,可以得到很好地电镜图像。 | |
mRNA、酶活力的检测 FluidFM OMNIUM提取的样本也可以直接用于酶活力的测定或mRNA的检测。 | |
单细胞质谱分析 FluidFM OMNIUM提取样本也可应用于单细胞代谢组学样本的质谱分析。 |
单细胞分离——直观、简单、低损
FluidFM® 一气呵成的细胞分离过程 使用FluidFM OMNIUM分离CHO细胞,仅仅点击几次鼠标,单个细胞便的完成了转移。 |
小样本细胞群分离十分友好 对于细胞数不足以使用流式细胞仪分选时,FluidFM OMNIUM很好的填补这个空白。 |
测试数据
肝细胞的微量注射
HeLa细胞的微量提取
CHO细胞的单细胞分离
纳米光刻DAPI染料
发表文章
单细胞注射:
1. O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904?1907. doi:10.1002/ smll.201202276A.
2. Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501?2507. doi:10.1021/nl901384x
单细胞提取:
1. O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibá?ez, R. Steinhoff, R. Br?nnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367
2. O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.
单细胞分离:
1. O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j
2. P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P.
3. D?rig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2),****** doi:10.1063/1.3462979
新发表:
2021
1. M. Mathelié-Guinlet, F. Viela, J. Dehullu, S. Filimova, J.M. Rauceo, P.N. Lipke & Y.F. Dufrêne. Single-cell fluidic force microscopy reveals stress-dependent molecular interactions in yeast mating. (2021) Commun Biol. doi: 10.1038/s42003******br/>AFM Series: Adhesion of single cells
2020
1. A.G. Nagy, A. Bonyár, I. Székács & R. Horvath. Analysis of single-cell force-spectroscopy data of Vero cells recorded by FluidFM OMNIUM. (2020) IEEE 26th International Symposium for Design and Technology in Electronic Packaging (SIITME). doi: 10.1109/SIITME50350.2020.9292265, BIO Series: Adhesion of single cells
2. I. Demir, J. Blockx, E. Dague, P. Guiraud, W. Thielmans, K. Muylaert & C. Formosa-Dague. Nanoscale Evidence Unravels Microalgae Flocculation Mechanism Induced by Chitosan. (2020) ACS Applied Biomaterials. doi: 10.1021/acsabm.0c007722. AFM Series: Adhesion of single cells
3. P. Saha, T. Duanis-Assaf & M. Reches. Fundamentals and Applications of FluidFM Technology in Single-Cell Studies. (2020) Advanced Materials Interfaces. doi: 10.1002/admi.20001115. AFM Series: REVIEW
4. T. Schlotter, S. Weaver, C. Forró, D. Momotenko, J. Voros, T. Zambelli & M. Aramesh. Force-Controlled formation of dynamic nanopores for single-biomolecule sensing and single-cell secretomics. (2020) ACS Nano. doi: 10.1021/acs.nano.0c04281. AFM Series: SICM, other
5. L. Hofherr, C. Müller-Renno, C. Ziegler. FluidFM as a tool to study adhesion forces of bacteria - Optimization of parameters and comparison to conventional bacterial probe Scanning Force Spectroscopy. (2020). PLOS ONE. doi: 10.1371/journal.pone.0227395. AFM Series: Adhesion of single bacteria
6. T. Schlotter, S. Weaver, T. Zambelli, J. Voros & M. Aramesh. Force-controlled nanopores for single cell measurements using micro-channelled AFM Cantilevers. (2020). Biophysical Journal. doi: 10.1016/j.bpj.2019.11.1066. AFM Series: Other
7. J. Zhang, H. Yu, B. Harris, Y. Zheng, U. Celik, L. Na, R. Faller, X. Chen, D. R. Haudenschild, G. Liu. New Means to Control Molecular Assembly (2020) ACS Publications. doi.org/10.1021/acs.jpcc.9b11377. BIO Series: Nanolithography
8. P. Wysotzki, A. Sancho, J. Gimsa, J. Groll. A comparative analysis of detachment forces and energies in initial and mature cell-material interaction (2020) Science Direct. doi.org/10.1016/j.colsurfb.2020.110894. AFM Series: Single Force Spectroscopy
9. M. Sztilkovics, T. Gerecsei, B. Peter, A. Saftics, S. Kurunczi, I. Szekacs, B. Szabo & R. Horvath. Single-cell adhesion force kinetics of cell populations from combined label-free optical biosensor and roOMNIUMic fluidic force microscopy. (2020) Scientific Reports. doi: 10.1038/s41598****** BIO Series: Adhesion of single cells
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瑞士Cytosurge多功能单细胞显微操作系统,FluidFM OMNIUM
瑞士Cytosurge多功能单细胞显微操作系统信息由QUANTUM量子科学仪器贸易(北京)有限公司为您提供,如您想了解更多关于瑞士Cytosurge多功能单细胞显微操作系统报价、型号、参数等信息,欢迎来电或留言咨询。
近日,北京大学工学院黄建永课题组在Nature Communications上在线发表了题为“Geometric constraint-triggered collagen expression mediates bacterial-host adhesion”的研究论文。本文基于多功能单细胞显微操作系统FluidFM的单细胞力谱技术(Single cell fo
瑞士Cytosurge公司推出的多功能单细胞显微操作系统——FluidFM OMNIUM,是一款将原子力系统、显微成像系统、微流控系统、活细胞培养系统融为一体的单细胞显微操作平台,该平台打开了传统细胞实验手段无法触及领域的大门,突破了单细胞研究、药物开发、细胞系开发中的障碍,主要功能包括单细胞提取、单细胞分离、单细胞注射、单细胞力谱等。深度应用于CRISPR基因组编辑、单克隆细胞系开发、病毒学、神经科学和生物力学
2023年5月18日-19日,由北京大学生命科学学院,蛋白质科学研究(北京)国家重大科技基础设施北京大学基地,Quantum Design中国子公司,瑞士Cytosurge公司共同举办的多功能单细胞显微操作系统2023年度用户峰会暨FluidFM 技术应用研讨会圆满落幕。本次会议共有北京大学、清华大学、中国科学院、中国医学科学院等高校和科研单位的50余名老师和学生参加,旨在为来自世界各地的研究人员、学者搭建一个良好的交流平台,展示他们借助多功能单细胞显微操
研讨会概述:流体力显微镜( FluidFM )通过将传统的原子力显微镜AFM与微流控技术相结合,从而实现fL级的液体局部精确调节。这项技术大大拓展了传统原子力显微镜的适用范围,可广泛应用于基因编辑、单细胞组学、单细胞分选、细胞生物力学等领域。FluidFM技术研讨会旨在为来自世界各地的研究人员、学者搭建一个良好的交流平台,展示他们借助FluidFM技术取得的创新性成果,为参会人员提供更多的启迪。研讨会将于2023年5月18日-19日在北京大学举办,主要涵盖
多功能单细胞显微操作系统——FluidFM OMNIUM,是瑞士Cytosurge公司研发推出的一款将原子力系统、显微成像系统、微流控系统、活细胞培养系统融为一体的单细胞显微操作平台,其核心技术——FluidFM技术采用了纳米级中空探针,轻松实现单个细胞水平、fL级别超高精度、自动化的细胞操作。近日,Quantum Design中国公司在西湖大学完成了单细胞显微操作系统FluidFM的安装工作,并对用户进行了相关知识和设备操作的全面培训。该设备的顺利验收,
单程细胞具有复杂生物学性质,它们通过细胞外基质ECM形成紧密的细胞与基质细胞与细胞连接,诸如上皮细胞通过这种特殊的链接方式构成了屏障层保护人体免受外界损伤。因此细胞之间以及细胞基底的粘附力测定对于研究细胞粘附蛋白的机制有着重要意义。使用力学工具测量细胞间以及细胞与基质之间的粘附力始终不是一件容易的事情。首先,由于细胞与基质的作用力仅为nN级别,因此需要力学精度较高的设备才能够测量,而且在这其中较为适合的工具为原子力显微镜(AFM)。原子力显微镜能够提供纳米
目前,单细胞组学分析大都依赖于将细胞裂解的方案,单细胞活检是少有的非侵入性的单细胞分析方法,它允许研究人员在不杀死细胞的情况下获取细胞的转录组信息,单细胞组学通过分离和分析单个细胞的分子成分来阐述细胞异质性。从单细胞活检中获得的基因表达谱是裂解方案获取细胞转录组的全面升级 (Chen et al., Nature, 2022)。FluidFM OMNIUM在单细胞组学研究中的特征:多功能单细胞显微操作系统- FluidFM OMNIUM
单细胞测序在疾病诊断和细胞异质性研究中发挥着重要作用,单细胞测序已经让我们能以全新的方式理解细胞的生化过程。然而目前的单细胞测序手段需要将细胞消化并裂解才能够进行,而细胞状态在这一操作中不可避免的会发生改变,因此很难掌握细胞真实的基因表达情况。近日,来自中国科学院深圳先进技术研究院研究员陈万泽以第一作者身份在国际期刊Nature上发表长文,使用多功能单细胞显微操作系统FluidFM创建了一种原位活细胞基因测序方法Live-Seq,这种方法能够在不杀死细胞的
单细胞力谱在生命科学、细胞生物学研究中起着至关重要的作用。细胞的力学特性直接反映了细胞的生理状态,高通量测量单细胞的力学特征在疾病的诊断和治疗中具有广泛的应用前景。然而传统手段却有着诸多局限[1],这主要原因是缺乏一种能够简单、高效抓取细胞并进行力学测定的手段[2]。多功能单细胞显微操作FluidFM技术的出现给单细胞力学的研究带来了新的希望。该技术结合了原子力显微成像技术与微流控技术,能够通过中空的原子力探针将微球或细胞轻松进行抓取,进而通过细胞与细胞、
[报告简介]单细胞的操纵一直是细胞生物学领域的热点和难点,尤其是在不损害细胞活力的情况下从细胞中提取细胞器或将外源物质直接导入到细胞中。截止到目前,尽管单细胞技术有了较大的发展,但要实现将细胞器从一个细胞移植到另一个细胞,除了更大的卵母细胞外,几乎是不可能实现的。线粒体和复杂的内膜系统是真核细胞的重要特征,是细胞中能量转换的核心,与细胞代谢和信号通路以及细胞命运紧密联系在一起。线粒体含有自身的遗传成分(mtDNA),通常是严格垂直遗传给子细胞的。到目前为止
[报告简介]单细胞粘附力作为生物机械学分支的重要组成部分,是细胞与外周相互作用的直观体现,能够有效的反映出细胞与基质或细胞之间相互作用能力。细胞与基质之间的作用力十分微小,一般都在nN级别,过去通常使用原子力显微镜才能够进行测量。但是原子力显微镜方案往往具有通量低,操作繁琐等问题,使得单细胞力谱的研究非常繁琐。基于此,Cytosurge推出的全新多功能单细胞显微操作FluidFM技术给细胞力谱测量带来了新的希望。该技术结合了的原子力显微镜探测技术与微流体控
摘要:线粒体和复杂的内膜系统是真核细胞的重要特征。到目前为止,对活细胞内的细胞器进行操纵仍然十分困难。多功能单细胞显微操作FluidFM技术能够从活细胞中提取、注射细胞器,将定量的线粒体移植到细胞中,同时保持它们的活力。近期,Julia A. Vorholt课题组使用多功能单细胞显微操作FluidFM技术,将线粒体移植至培养的细胞中,并实时跟踪线粒体注射后的情况,监测它们在新宿主细胞中的命运。通过跟踪,作者发现与受体细胞线粒体网络融合发生在移植后20分钟,
病毒的感染研究通常是在大量细胞实验中进行的,一般要将许多培养细胞同时暴露于病毒中,这就使得研究单个病毒侵入事件和研究病毒在单个细胞之间的感染传播十分困难。多功能单细胞显微操作FluidFM技术通过温和的、微通道和力反馈控制的探针,将单个病毒粒子突破性的沉积在选定的单个细胞上,从而实现前所未有的控制,在单个病毒粒子--单个细胞水平上研究病毒感染。FluidFM技术可以帮助阐明关于毒性、病毒复制或宿主免疫应答的基本问题,从而促进新型抗病毒药物和疫苗的开发。放置
线上圆桌会议将为FluidFM现有及未来用户提供一个相互交流的机会。会议中,大家将畅谈应用FluidFM技术取得的新成果,对FluidFM的新应用进行交流与合作。快来加入这个为期两天的技术盛宴吧,会议中,来自各地的FluidFM研究人员将进行报告分享,并在特定应用的圆桌会议上探索更多FluidFM技术的应用。由于疫情原因,今年的活动在线上举办。 互联与合作与全FluidFM用户一起,交流和讨论FluidFM相关的研究成果和新应用方案。学习与交流从
瑞士Cytosurge公司是的单细胞操作系统制造商。近日,Quantum Design中国公司与Cytosurge公司签署新版合作代理协议,正式成为瑞士Cytosurge公司单细胞显微操作系统FluidFM OMNIUM中国区域代理,负责该产品的市场推广、技术支持和售后服务等工作。FluidFM OMNIUM系统简介FluidFM OMNIUM是将原子力系统、显微成像系统、微流控系统、活细胞培养系统融为一体的单细胞显微操作平台,其核心技术——FluidFM
报告简介: 随着CRISPR/Cas技术的发展,将突变的引入基因组并获得细胞系的技术路线已经成为现代生物医学研究的重中之重。然而,要将这种基因编辑的能力转化为疾病治疗的能力,必须跨越几个障碍。首先基因组编辑递送效率仍然较低;其次仍然存在非特异基因组区域突变的风险;另外同源重组编辑效率仍较低。为了跨越这些障碍,我们将FluidFM®技术与CRISPR相结合,将基因编辑复合物直接注射到目标细胞的细胞核中,从而我们成功跨越了基因组递送的障碍。此外,将C
拉曼光谱技术近年来,拉曼光谱和成像技术, 得益于其相对于红外光谱技术优异的空间分辨率等优势,在研究样品的分子振动方向得到了广泛的应用,尤其是生物样品,因为水中的拉曼光谱背景信号更弱。相干拉曼散射显微技术(Coherent Raman scattering microscopy)近些年也得到了大力的发展,其基于相干反斯托克斯拉曼散射(coherent anti-Stokes Raman scattering)或受激拉曼散射(stimulated Raman
【研究背景】血管生成是指从现有血管中内皮细胞生长而生成新的血管,一旦血管开始生成,被称为细胞的特殊内皮细胞就会开始发芽过程。由此,血管芽内皮细胞的长出标志着血管生成的开始,这一过程在生理学和病理生理学过程中至关重要。然而,细胞外基质(ECM)的机械特性如何调节细胞的形成在一定程度上被忽视了。细胞的特性是血管生成和组织工程的关键,它可以定向迁移到无血管区域,对终形成的血管形态起决定作用。迄今为止,各种生化信号分子因素如 MST1-FOXO1等多见报道,然而功
[报告简介]在单细胞水平上研究神经元的相互作用,有助于理解大脑的工作机理以及脑部疾病的相关机制。本次网络研讨会,我们将介绍FluidFM技术在单细胞水平上对神经网络机制研究工作的相关进展。本次报告共分为两个部分:部分,Dörig博士将聚焦神经生物学领域,介绍FluidFM技术在单细胞,尤其是神经细胞操作领域的新应用。第二部分,Vörös教授将介绍他团队在过去十年中如何在FluidFM技术的帮助下构建、修饰和分析神经网络研究工作,并进行讨论。[讲座重点]什么
2021年5月25、26日,Quantum Design中国公司联合北京大学生命科学学院仪器中心在北大金光生命科学大楼举办了“FluidFM技术在活细胞单细胞组学领域的新进展”workshop。参会人员包括北京大学生命科学学院、北京大学医学部基础医学院、北京大学口腔医院、北京林业大学、中科院力学研究所、中科院近代物理研究所(兰州)、浙江大学(杭州)、山东中医药大学(济南)、中国海洋大学(青岛)等国内单细胞研究领域知名实验室的学者、老师和学生。Quantum
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