Western Blotting实验技术对外服务(传统方法)
免疫印迹(immunoblotting)又称蛋白质印迹(Western blotting),它是根据抗原抗体的特异性结合检测复杂样品中的某种蛋白的方法。该法是在凝胶电泳和固相免疫测定技术基础上发展起来的一种新的免疫生化技术。由于免疫印迹具有SDS-PAGE的高分辨力和固相免疫测定的高特异性和敏感性,现已成为蛋白分析的一种常规技术。免疫印迹常用于鉴定某种蛋白,并能对蛋白进行定性和半定量分析。
操作流程:
1 样品准备
1)分别取大约200mg组织加入液氮碾磨成粉末状,按每200mg组织加900μl上样Buffer(无溴酚蓝)和100ul 10mg/ml PMSF,混匀,玻璃匀浆器冰点匀浆
2)4℃,12000rpm离心10min
3)取上清夜-70℃冻存24hr
5)4℃12000rpm再次离心10min,取上清分装,一份用于定蛋白,另一份加入溴酚蓝(0.1%(W/V))后于100℃加热4min,后于-20℃保存待用。
2 定蛋白及计算电泳上样量
根据总蛋白测定试剂盒说明书操作测定样本中的总蛋白含量,电泳上样量定为40ug
3 电泳
1)安装好电泳装置
2)根据不同的指标配制相应浓度的分离胶,灌胶约3/5体积,液封(<10%用0.1%SDS,>10%用异丙醇)
3)30min后,待凝后倾去封液
4)配5%的浓缩胶,灌胶至距平板顶部2mm处,插入梳子, 30min后,待凝后拔出梳子,用去离子水清洗加样孔,用滤纸吸干
5)上样:各样品取50ug上样,marker取10μl上样(上样前需按说明书进行预处理)
6)缓慢加入内、外槽缓冲液,接通电源,90v电泳至指示剂进入分离胶后,调电压至150V继续电泳
7)当指示剂距平板底端1cm处时停止电泳
4 转膜及检测
1)准备2个Φ12cm的平面皿,一个装去离子水浸泡NC膜20min,另一装转移缓冲液浸泡海绵和滤纸20min
2)取下胶,切除浓缩胶部分后,将分离胶浸入转移缓冲液中约5min
3)按顺序安装好转膜装置(黑色板-海绵-三层滤纸-凝胶-***纤维膜-三层滤纸-海绵-红色板)
4)完全排除气泡,4℃,100mA转膜2hr。
5)倾去转膜缓冲液,拆除转膜装置,将***纤维膜放入丽春红中摇床染色15min,用去离子水清洗至能看到条带,后用铅笔标出marker位置,再用去离子水震荡以去除浮色。在右上角剪去一角以辨上下左右
6)将膜转移至另一容器中,用5%脱脂奶粉封闭, 4℃过夜
7)将膜转移至尽可能小的容器中并加入稀释好的一抗
8)37℃摇床孵育约2hr
9)PBST洗涤4次,每次5min
10)将膜转移至尽可能小的容器中并加入稀释好的二抗,37℃摇床孵育约30min
11)PBST洗涤4次,每次5min
12)将膜转移至尽可能小的容器中并加入BCIP/NBT底物,室温孵育30min
13)取出NC膜,用蒸馏水漂洗后晾干
14)扫描及分析
服务要求:
样本要求:组织样品,每份样本约250-500mg,新鲜或正确保存的组织。细胞样本:每份样本:1*10 6-1*10 7细胞数。
客户提供有效的一抗,(国产抗体一般不接纳) 一抗自备或代购。
客户提供欲检测目的蛋白的详细背景资料。以及提供样本的种属,类型。
结果提供:
目的蛋白实验图片。
灰度分析结果。(免费分析)
内参结果。(免费跑胶)
详细的实验步骤。
免费提供蛋白样本保存液。
完成时间:
接受样本后,1月以内。
注意事项:
1、客户要确保模型建造的成功性。
2、客户要确保抗体的有效性。
3、如要加快的客户可以和我们联系沟通。
4、收费标准:以每张膜8个样本收费,不足8个样本的按8个样本收费)
威斯腾实验服务流程
威斯腾生物服务项目
分子生物学检测 | 蛋白质与免疫学 | 动物实验 |
实时荧光定量PCR | 单克隆抗体制备 | 帕金森疾病模型 |
免疫共沉淀(Co-IP) | 多克隆抗体制备 | 抑郁症动物模型 |
ELISA(酶联免疫吸附法)技术 | Western-blot 实验服务 | 脊髓损伤模型 |
生化指标检测 | 蛋白双向电泳实验服务 | 脑外损伤模型 |
双荧光素酶报告基因检测 | 原核蛋白表达纯化 | 骨神经损伤模型 |
染色质免疫共沉淀(ChIP) | 真核蛋白表达纯化 | 心肌缺血模型 |
GST pull Down | ITRAQ定量蛋白质组学 | 心力衰竭模型 |
| SLAC蛋白组学 | 肺动脉高血压动物模型 |
|
| 高血压模型 |
病毒包装 | 实验课题整体外包 | 粥样动脉硬化模型 |
过表达/干扰慢病毒包装纯化 | 整体课题外包 | 大脑中动脉阻塞模型 |
过表达/干扰腺病毒包装纯化 | 细胞整体实验外包 | 慢性之气管炎模型 |
逆转录病毒包装纯化 | 动物整体实验外包 | 过敏性哮喘模型 |
腺相关病毒包装纯化 |
| 肺炎大鼠模型 |
|
| 肝炎-肝硬化-肝癌模型 |
蛋白芯片 | 原代细胞培养 | 肝纤维化模型 |
细胞因子芯片 | 骨髓间充质干细胞培养 | 胆结石模型 |
BioPlex悬浮芯片 | 脂肪干细胞培养 | 急性胰腺炎模型 |
生长因子芯片 | 心肌成纤维细胞培养 | 急性肾衰竭模型 |
炎症因子芯片 | 软骨细胞培养 | 体内血栓模型 |
血管生成因子芯片 | 血管内皮细胞培养 | 关节炎模型 |
凋亡因子芯片 | 神经元细胞培养 | I型和II型糖尿病模型 |
趋化因子芯片 | 内皮组细胞原代培养 | 裸鼠成瘤 |
HuProt TM 20K人类蛋白组芯片 |
| 基因编辑动物 |
| 电生理相关服务 | 动物整体实验服务 |
| 膜片钳实验 |
|
细胞生物学检测 | 高通量测序 | 代谢组学 |
细胞原代培养 | mRNA测序 | 气相色谱GC/MS |
MTT检测 | LncRNA测序 | 液相色谱LC/MS |
细胞凋亡检测 | 全基因组测序 | 核磁共震NMR |
细胞周期检测 | RNA-Seq测序 |
|
细胞克隆形成实验 | 外显子测序 | 影像学相关实验 |
Transwell细胞迁移/侵袭 | 16s扩增子测序 | Micro-CT |
流式分选 | Small RNA测序 | 小动物活体成像 |
CCK8/XTT检测 | 宏基因组测序 | 核磁共振 |
台盼蓝检测细胞活性 | 单细胞测序 | PET-CT |
药物筛选细胞学实验 | circleRNA测序 |
|
细胞粘附性检测 | 甲基化测序 | 基因编辑动物 |
细胞划痕实验 |
| 条件性敲除小鼠/大鼠 |
细胞生物学整体实验 |
| 全基因敲除小鼠/大鼠 |
细胞成管实验 |
|
|
病理检测 | CRISPR/Cas9细胞敲除/敲入 | 基因芯片 |
扫描电镜 | 基因定点突变细胞系 | LncRNA芯片 |
透射电镜 | 单基因敲除细胞系 | miRNA芯片 |
HE染色 | 多基因敲除细胞系 | mRNA芯片 |
免疫组化 | 目的基因敲入细胞系 | 甲基化芯片(限人和小鼠来源样本) |
Tunel(原位末端凋亡法)检测 | 报告基因敲入细胞系 | SNP芯片(限人和小鼠来源样本) |
激光共聚焦 | miRNA/LncRNA敲除细胞系 |
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免疫荧光 |
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Masson染色 | CRISPR/Cas9动物敲除/敲入 | 科研设计指导&文章评估/润色 |
原位杂交 | 基因敲除大鼠/小鼠 | 科研文献论著翻译 |
荧光原位杂交 | 基因敲入大鼠/小鼠 | 论文翻译润色服务 |
特殊染色(PSA、茜素红、阿尔新蓝等) |
| 临床实验/科研实验设计方案指导 |
行为学检测 | 药物筛选服务项目 | 药效学评价 |
旷场实验 | 高通量自动药物筛选平台 | 抗肿瘤药物药效学评价 |
重复性刻板行为检测 | 细胞高内涵药物筛选平台 | 心血管系统药物药效学评价 |
动物跑台检测 | 蛋白质组学靶标研发平台 | 泌尿系统药物药效学评价 |
强迫游泳 | 分子药理研究平台 | 内分泌系统药物药效学评价 |
| 生物膜片钳药物筛选平台 | 抗炎免疫药物药效学评价 |
| 常规药物体外筛选 |
|
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