玉研仪器 冷热板测痛仪

冷热板测痛仪一款多功能的热疼痛阈值测试仪，适用于大鼠、小鼠麻醉、镇痛、神经性的药物筛选，为相关镇痛药物研究提供科学依据。

主要特色：

具备冷板和热板两种功能：能将生理性疼痛实验与病理性疼痛实验在同一台仪器上完成的仪器；

动物在无拘束状态下进行测试，能够准确反映动物的痛觉行为，可对动物行为的潜伏期和固定时间内舔足次数进行准确统计；

型号：35150

产品特点：

· 热板测试：根据著名的热板测试设计者N.B. Eddy 和D. Leinbach，进行麻醉类镇痛药快速精准筛查；

· 冷板痛觉测试：可用于研究冷感受器和冷异常性疼痛；

· 两种工作模式可选：固定温度，按照一定的升温/降温速度进行测试；

· 可额外选配的连接主机的辅助板，为老鼠提供测试之前的适应环境；

· 配备小鼠、大鼠通用的透明测试笼，配备防止凝雾的盖板；

· 配备测试软件，可用于管理结果的管路和统计；

主要参数：
· 工作温度：-5.0°C到65.0°C ，步进0.5°C (精度0.1°C )
· 控制方式：脚踏开关；
· 两种工作模式：固定温度测试，变温测试用于动态实验；
· 软件：具备友好的软件界面，方便用于设置实验和实验结果管理；
· 操控：4″3 触摸屏，用于设置和监控测试；
· 数据拷贝：标配USB拷贝功能，也可通过USB接口连接到电脑；

采用的新技术：
· 具有更快的升温和降温速度；

· 加温和降温过程具备更好的稳定性和均匀性；
· 分析软件作为了标准配置，可提供远程诊断和互联网接入；
· 操作员可以在电脑上组织实验，可通过U盘对数据进行拷贝；
· 测试指标、实验分组和各种参数（温度、模式等）可以快速设置并保存；

· 测试参数和测试数据可以Text、Excel或Pdf格式导出；

· 可通过DropBox、OneDrive、GoogleDrive保存到云端；

· 数据可过USB数据线传输到电脑，测试结果在电脑软件中会被更加完整的显示；

· 在软件中可根据参数与测试结果对数据进行分类；

· 用户可以在测试之前和之后添加信息，结果可以树状结构显示，可以进行拖放和重新布局；

可根据实验需求，将35150型冷热板仪升级为：热逃逸实验系统（TPP实验）

这是一套评估动物热敏感性的工具，可以测试实验动物对不同区域、不同温度热刺激的学习能力和综合反应；

动物会通过学习逃到另外一侧来减少疼痛，设备可以记录清醒、无约束的动物逃避不舒适或有害的热板或者冷板的行为；

可用来测试和记录逃逸潜伏期。

部分应用文献：

1.Orthofer, Michael, et al. "Identification of ALK in Thinness."Cell181.6 (2020): 1246-1262.doi: 10.1016/j.cell.2020.04.034
2.Trendafilova, Teodora, et al. "Sodium-calcium exchanger-3 regulates pain “wind-up”: From human psychophysics to spinal mechanisms."Neuron110.16 (2022): 2571-2587. doi:
3.Cao, Chenxi, et al. "Cholesterol-induced LRP3 downregulation promotes cartilage degeneration in osteoarthritis by targeting Syndecan-4."Nature Communications13.1 (2022): 7139. doi: 10.1038/s41467******/span>
4.Prieto, Martin, et al. "Light activated pulsatile drug delivery for prolonged peripheral nerve block."Biomaterials283 (2022): 121453. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121453
5.Hou, Yiwen, et al. "Coordinated activity of a central pathway drives associative opioid analgesic tolerance." Science Advances 9.6 (2023): eabo5627. doi:
6.Xing, Lei, et al. "Expression of human‐specific ARHGAP11B in mice leads to neocortex expansion and increased memory flexibility."The EMBO journal40.13 (2021): e107093. doi:
7.Cetin, Zeynep, et al. "The Role of Hydrogen Sulfide in the Development of Tolerance and Dependence to Morp*hine in Mice."Neuropsychobiology80.3 (2021): 264-270. doi: 10.1159******/span>
8.Ford, Neil C., et al. "Role of primary sensory neurone cannabinoid type-1 receptors in pain and the analgesic effects of the peripherally acting agonist CB-*13 in mice."British journal of anaesthesia128.1 (2022): 159-173.doi:10.1016/j.bja.2021.10.020
9.Blomqvist, Kim J., et al. "Systemic hypertonic saline enhances glymphatic spinal cord delivery of lumbar intrathecal morp*hine."Journal of Controlled Release344 (2022): 214-224. doi：10.1016/j.jconrel.2022.03.022
10.Gan, Zheng, et al. "Repetitive non-invasive prefrontal stimulation reverses neuropathic pain via neural remodelling in mice."Progress in neurobiology201 (2021): 102009. doi: 1
11.Alejo, Teresa, et al. "Nanogels with high loading of anesthetic nanocrystals for extended duration of sciatic nerve block."ACS Applied Materials & Interfaces13.15 (2021): 17220-17235. doi:
12.Li, Miao, et al. "Activation of VIP interneurons in the prefrontal cortex ameliorates neuropathic pain aversiveness."Cell reports40.11 (2022): 111333.doi: 10.1016/j.celrep.2022.111333
13.Morelli, Chiara, et al. "Identification of a population of peripheral sensory neurons that regulates blood pressure."Cell Reports35.9 (2021): 109191.doi 10.1016/j.celrep.2021.109191
14.Huang, Weiyuan, et al. "TRESK channel contributes to depolarization-induced shunting inhibition and modulates epileptic seizures."Cell Reports36.3 (2021): 109404. doi: 10.1016/j.celrep.2021.109404
15.Ouyang, Handong et al. “The YTHDF1-TRAF6 pathway regulates the neuroinflammatory response and contributes to morp*hine tolerance and hyperalgesia in the periaqueductal gray.”Journal of neuroinflammationvol. 19,1 310. 22 Dec. 2022, doi:10.1186/s12974******