离子淌度分离概念的引入使得蛋白质组学进入了4D新时代。4D-蛋白质组学是在3D分离即保留时间(retention time)、质荷比(m/z)、离子强度(intensity)这三个维度的基础之上增加了第四个维度--离子淌度(mobility)的分离(图1),进而大幅度的提高扫描速度和检测灵敏度,带来蛋白质组学在鉴定深度、检测周期、定量准确性等性能的全面提升。
以质谱技术为核心的蛋白组学技术是已经发展的比较成熟,目前面临着怎样把基础研究向临床蛋白组学转化的挑战,怎样提高样本分析通量和定量稳定性是目前大家共同努力的方向。
图2. DIA采集策略
目前一些DIA策略的采集方法已经被开发来,其中苏黎世联邦理工学院的Ruedi Aebersold教授做为DIA策略的领军人物之一,他和同事们建立了很多被广泛使用的基于质谱的蛋白质组学分析方法,包括但不限于最早的稳定同位素化学标记方法ICAT,开源软件Trans-Proteome Pipeline,靶向蛋白质组学(SRM)的多项技术和软件。目前他们团队致力于将这些蛋白质质谱与蛋白质组学技术应用到临床,这需要从临床样品制备、质谱技术到数据分析都要有突破甚至革命性的创新。
图3. 全新diaPASEF技术开发团队
传统的DIA策略能保证在一个预设m/z窗口里的每一个母离子都能被获得碎片信息,但谱图的高度复杂让数据分析极具挑战,更窄的隔离窗口能将低谱图的复杂度,但需要增加循环时间来覆盖完整的m/z范围,并且如果采用32或者64个窗口时,由于每个母离子在第个循环里只能被采集一次,离子的利用率非常低,只有1-3%。布鲁克timsTOF Pro的PASEF的高扫描速度和高灵敏度已经被广泛证明,在timsTOF Pro上开发dia-PASEF技术显示出其高扫描速度和高灵敏度的优势的同时,离子淌度提供的额外一个维度的分离,使DIA数据采集时在不牺牲窗口循环速度的同时,降低谱图复杂度和提高离子利用率。在正在举行的2019人类蛋白组学大会上(HUPO 2019),又有一系列的dia-PASEF的全新数据和应用实例发布出来(了解详情,请点击文末的“阅读原文”)。
图4. 全新dia-PASEF技术原理与优势
视频介绍:dia-PASEF
专家点评
参考文献:
1.Allison Doerr,Special feature: Method of the Year 2014,Nat. Met. 2015, 12, 1, 35
2. Florian Meier, et al., Parallel accumulation – serial fragmentation combined with data-independent acquisition (diaPASEF): Bottom-up proteomics with near optimal ion usage. bioRxiv. Posted May 31, 2019
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