基于timsTOF fleX的深度空间代谢组学解决方案

发布时间： 2023-11-16 11:16 来源：布鲁克（北京）科技有限公司-质谱仪器

1前言

细胞是疾病的基础，组织的质谱分析为了解细胞内发生的变化提供了最直接、最灵敏的途径。常见的LC-MS组学分析技术需要先将样本做匀浆处理，然而，样本被匀浆后检测，会丢失待测分子的空间位置信息。质谱成像是一种原位分析技术，它可以直接从组织中获得上千种分子的空间分布信息。为了弥补组织匀浆法的不足，布鲁克公司综合上述技术的优势，率先推出了SpatialOMx^®深度空间组学实验方案。首先借助 timsTOF fleX质谱仪的MALDI成像功能来识别并定位组织切片中的特定区域（ROI），再针对该区域、通过timsTOF fleX连接UPLC进行更加深入的4D-组学表征。图1展示了SpatialOMx^®的工作流程示意图。

2实验方法

制备冷冻的大鼠鼠脑组织切片（厚度10μm），附着到IntelliSlides^®导电载玻片上，然后喷涂DHAP基质。通过布鲁克timsTOF fleX质谱仪以50μm的空间分辨率，在正离子模式下对鼠脑样本进行MALDI质谱成像数据采集。SCiLS^™ Lab 2023a和MetaboScape^® 2023a软件分别用于成像数据的统计分析和分子注释。首先，成像数据通过SCiLS^™Lab 2023a软件进行无监督的统计分析—空间聚类分析，划分为不同的区域，此次实验划分为两个区域（图2B），用于后续的组学实验。

结合上述的区域划分结果，从一片连续的脑切片沿着边界进行切割、分别获取了图2B中两个区域所对应的组织。分别对两部分组织进行脂质分子提取：由400µL叔甲基丁基、80µL甲醇和200µL超纯水组成的提取缓冲液进行提取；涡旋，超声处理10min；3000rpm离心10min，取200µL上清液；然后用真空干燥器干燥约10min；最后用9:1的甲醇：二氯甲烷的混合溶液进行重悬。LC-MS分析实验条件：Intensity solo2 C18色谱柱（100x2.1mm），流动相A（乙腈:水:1M甲酸铵=600:390:10，添加0.1%甲酸），流动相B（异丙醛:乙腈:1M甲酸铵=900:90:10，添加0.1%甲酸），进样10µL。质控是通过对整片脑组织切片进行提取、处理，上样不同的体积，以此来确定各种脂质种类的检测限。

3实验结果与讨论

SCiLS Lab 2023a对大鼠鼠脑的成像数据进行空间聚类分析，可以划分成蓝色和黄色两个区域，如图2B所示，分别对应脑灰质和脑白质。

将蓝色和黄色的区域分别切割下来，提取脂质后分别进行LC-MS/MS组学分析，获取了精确质量数、MS/MS以及碰撞截面积（CCS）值等信息，并通过MetaboScape 2023a软件进行了feature提取和分子信息标注。一共提取并标注了600个特征峰，对其中的11个脂质类别中的约100种脂质，采用Rule-based Lipid Annotations进行脂质注释，注释结果如图3所示。

针对目标分子采集二级质谱数据，将获得的MS/MS谱图与NIST 2020 MS/MS数据库进行比对，以HexCer 18:1;O2/24:1为例，比对结果如图4所示。

实验总共进样22次，包括5次空白对照，5次质控，以及从连续切片的脑组织中经过切割分别获得的两组组织样本（蓝色区域和黄色区域），每组各做了3次平行实验。结果如图5所示，左图为每个样本单独进样的峰强度值，右图为空白对照、质控、蓝色区域和黄色区域样本间的组别分析。

通过MALDI质谱成像获得的HexCer 18:1;O2/24:1的空间分布图像如图6所示，HexCer 18:1;O2/24:1主要分布在脑白质区域。该结果与图5中经过LC-MS/MS组学分析所获得的含量趋势是一致的。

4结论

布鲁克的timsTOF fleX质谱仪同时具备MALDI成像功能和LC-MS/MS组学分析功能，可以在同一台仪器上实现空间组学工作流程中的两大核心步骤。本文以大鼠鼠脑作为实验样本，通过MALDI成像实验，在空间上指导发现特定目标区域，并针对该区域进行深度4D-组学分析；配合SCiLS Lab和MetaboScape软件的使用，实现了生物分子的多维度、全景式空间信息表征。